Metode de determinare a leucocitelor. Numărarea numărului de leucocite: ce metodă să alegeți? Definiții ale coagulării sângelui conform lui Sukharev




5.




Necesar pentru munca:

Realizarea lucrarii:

Scopul lucrării:

Necesar pentru munca:

Realizarea lucrarii:

nu se scutura

· fără hemoliză;

· hemoliză parțială;

· hemoliză completă.

Determinarea câmpurilor vizuale.

Determinarea acuității vizuale.

16. Volumele și capacitățile mareale. Metodologia de determinare a capacitatii vitale. Spirografie și spirometrie.

Aplicarea miografiei

· În psihofiziologie pentru studiul tiparelor legate de vârstă.

· În medicină pentru diagnosticarea leziunilor sistemului nervos periferic și central.

· În fiziologia muncii și sportului.

· La studierea funcției motorii a animalelor și a oamenilor.

· În studiile de activitate nervoasă superioară.

· În psihologia ingineriei (de exemplu, când studiezi oboseala, dezvoltă o abilitate motrică).

· Pentru evaluarea la refacerea funcției motorii afectate în ortopedie și protetică.

Tabelul 36

Costurile metabolismului bazal al persoanelor sănătoase în funcție de vârstă și sex

Diferența dintre indicatorii metabolismului bazal adecvat, calculate prin diferite metode, nu depășește de obicei 10%.

Termometrie.

Temperatura corpului este un indicator important al sănătății umane. Temperatura normală a corpului pentru adulții aflați în stare de veghe și odihnă fiziologică (când este măsurată la axilă) este considerată o temperatură cuprinsă între 36°C și 36,9°C. Cu toate acestea, trebuie avut în vedere că în timpul somnului, între 3 și 5 a.m., temperatura corpului poate atinge valori minime de 35,1-36,0 ° C. Astfel, temperatura normală a corpului atunci când este măsurată la axilă este de 36±0,9°C (35,1 - 36,9°C). O temperatură de 37°C și peste este considerată ridicată ( hipertermie), și 35°C și mai jos – ca redus ( hipotermie). Când sunt măsurate în zonele profunde ale corpului (rect, esofag), valorile sale normale sunt cu 0,5°C mai mari decât în ​​axilă.

Scopul lucrării este de a determina timpul minim necesar pentru măsurarea cu precizie a temperaturii axilare folosind mercur sau termometre medicale electronice la axilă.

Materiale si echipamente: termometru cu mercur maxim, cronometru, alcool 70%, vata.

Progresul lucrărilor. Pielea axilei trebuie să fie uscată, deoarece cu pielea umedă termometrul va indica temperaturi mai scăzute datorită evaporării umidității de pe suprafața rezervorului de mercur. Subiectul trebuie să țină termometrul pe toată durata măsurării, apăsându-și umărul strâns pe corp. Când se măsoară temperatura, persoana trebuie să fie trează și complet în repaus.

Inspectați termometrul medical, asigurați-vă că este intact și ștergeți-l cu alcool. Agitați termometrul până când temperatura ajunge la 35°C. Puneți termometrul în subsuoară. Înregistrați citirile termometrului după 3, 5, 8, 10, 15 minute. Apoi efectuați termometria folosind un termometru electronic, înregistrând citirile pe scala dispozitivului după 30 de secunde, 1, 2, 3, 5, 8, 10, 15 minute. La efectuarea lucrărilor, este necesar să vă asigurați că capul mercurului și vârful senzorului termometrului electric sunt ținute de-a lungul liniei axilare mijlocie.

Pe baza rezultatelor experimentelor, construiți grafice ale citirilor de mercur și termometre electronice în funcție de timpul de măsurare a temperaturii.

Concluzie: subiectul are o temperatură corporală măsurată la axilă _____, durata măsurării sale cu mercur ar trebui să fie de minim ___ minute.

21. Metodologia de formare a reflexelor conditionate.

Anumite condiții sunt necesare pentru formarea unui reflex condiționat. Un stimul condiționat, sau semnal, poate fi orice schimbare care are loc în mediul extern sau în interiorul corpului. Pentru fiecare stimul condiționat (aprinderea unui bec, sunete muzicale, zgomote, presiune pe suprafața pielii, atingere, zgâriere, înțepătură, miros etc.) se poate dezvolta un reflex condiționat.

Pentru formarea unui reflex conditionat la un stimul conditionat (indiferent), este necesar ca acest semnal conditionat sa il precede pe cel neconditionat si sa-l insoteasca ceva timp in timpul actiunii acestuia din urma. De exemplu, un clopoțel (semnal condiționat) ar trebui să înceapă să sune cu 5-30 s înainte ca câinele să primească hrană (stimul necondiționat) și să însoțească mâncarea pentru ceva timp. Pentru ca un reflex condiționat să se dezvolte, această combinație trebuie repetată de mai multe ori.

Dacă combinați un stimul condiționat cu întărirea alimentară, atunci în curând se va forma un reflex condiționat față de acest stimul anterior indiferent. Același semnal poate deveni un stimul în timpul dezvoltării diferitelor reflexe condiționate. Într-un caz, apelul poate provoca salivație, iar în altul - un reflex de apărare etc. Acest lucru se explică prin faptul că natura reflexului condiționat este determinată de reflexul necondiționat de întărire, adică. reflexele condiţionate se formează pe baza celor necondiţionate.

I.P. Pavlov a dezvoltat o metodă pentru formarea reflexelor condiționate. Câinele este plasat într-o cameră specială, complet izolată de lumea exterioară (nu ar trebui să pătrundă în cameră iritante din mediul extern). Experimentatorul însuși se află în afara camerei. Cu ajutorul echipamentelor speciale se creează diverși stimuli, se acordă întărire alimentară, se înregistrează salivația etc. La început I.P. Pavlov a construit o cameră complet izolată, dar mai târziu a devenit clar că o astfel de izolare absolută nu era necesară.

Astfel, sunt necesare următoarele condiții speciale pentru formarea reflexelor condiționate.

1. Prezența a doi stimuli: indiferenți (indiferenți), pe care doresc să-i condiționeze, și necondiționați, care provoacă o anumită activitate a corpului, de exemplu, salivație, retragerea unei labe etc.

2. Un stimul indiferent (lumină, sunet etc.) trebuie să îl precedă pe cel necondiționat și să însoțească acțiunea acestuia din urmă pentru ceva timp.

3. Stimulul necondiționat trebuie să fie mai puternic decât cel condiționat: pentru un câine bine hrănit cu excitabilitate scăzută a centrului alimentar, clopoțelul nu va deveni un stimul alimentar condiționat.

4. Lipsa stimulilor străini care distrag atenția.

5. Starea activă a cortexului. Acest lucru este valabil și pentru oameni. Dacă prelegerea nu este interesantă și se dezvoltă o stare de somnolență pe jumătate, atunci materialul nu este reținut. O prelegere plină de viață, emoționantă, cu exemple interesante, este bine amintită.

Electroencefalograma (EEG) ca metodă de înregistrare a fenomenelor electrice în cortexul cerebral. Clasificarea ritmurilor EEG.

Electroencefalografia (EEG) este o metodă de înregistrare a activității bioelectrice a creierului produsă prin scalpul intact.

Electrocorticografie (ECoG) - înregistrarea se realizează cu aplicarea electrozilor direct pe suprafața creierului. Introducerea electrozilor în părțile profunde ale creierului permite electrosubcorticografie (ESCoG).

Scurte caracteristici ale EEG-ului unei persoane sănătoase. În cele mai multe cazuri, la o persoană sănătoasă trează, întinsă în poziție culcat cu ochii închiși sau în întuneric, se înregistrează relativ regulate, aproape de oscilații sinusoidale ale biopotențialelor creierului, care sunt rezultatul multor procese electrice din cadrul acestuia. diverse formațiuni, formând o curbă complexă sub formă de undă, căreia i se aplică condiționat conceptul de frecvență, amplitudine, stări de fază.

Curbe deosebit de înalte și stabile sunt înregistrate în regiunea parieto-occipitală, unică sau de grup - în alte părți ale creierului. N. Berger (1929) a numit aceste curbe ritm alfa; tensiunea lor când este înregistrată prin electrozi amplasați pe piele variază între 50-100 μV (în medie 40 - 50 μV), durata 60-140 ms și frecvența 8-13 oscilații pe secundă. Rareori rămân stabile, amplitudinea undelor fie scade, fie crește, dând un model de „fusuri”, „umflături”, „bătăi”. Ritmul alfa predomină în EEG al adulților sănătoși în 70% din cazuri, în altele este slab exprimat sau absent (până la 10% din cazuri). În părțile anterioare ale creierului, precum și atunci când activitatea alfa este suprimată de stimuli externi, sunt detectate unde beta. Frecvența lor este în medie de 25 de vibrații pe secundă și variază de la 15 la 30 de vibrații pe secundă; Undele cu frecvență mai mare se numesc unde gamma.

Amplitudinea undelor beta este de 3-4 ori mai mică decât undele alfa, iar în unele înregistrări aceste fluctuații sunt aproape identice. Țesuturile care acoperă creierul prezintă rezistență electrică ridicată (5*103-15*103 Ohmi) și reduc biopotențialele de 5-10 ori, iar amplitudinea oscilațiilor rapide scade mai repede în comparație cu undele lente.

Bazele clasificării ritmurilor electroencefalogramei (EEG):

EEG tradițional (gamă de frecvență 0,5-100 Hz):

Ritm gamma (frecvență mai mare de 40 Hz, amplitudine mai mică de 15 μV);

Ritm beta (frecvență 14-40 Hz, amplitudine mai mică de 25 μV);

Ritm alfa (frecvență 8-13 Hz, amplitudine 10-150 µV);

Ritm theta (frecvență 4-7 Hz, amplitudine 75-150 µV);

Ritm delta (frecvență 0,5-3 Hz, amplitudine peste 100 μV).

Activitate bioelectrică ultra-lentă

(gamă de frecvență mai mică de 0,5 Hz):

Unde secunde sau zeta (frecvență 0,1-0,5 Hz, perioadă de la 2 la 10 secunde, amplitudine mai mică de zeci și sute de microvolți);

Unde multisecunde sau tau (frecvență 0,0167-0,1 Hz, perioadă de la 10 la 60 de secunde, amplitudine sute de μV)

Unde minute și multiminute sau epsilon (frecvență mai mică de 0,0167 Hz, perioadă de 1 minut sau mai mult, amplitudine de sute de μV, unități și zeci de mV)

Potențial de milivolt sau potențial omega relativ constant (stabil ore în șir, amplitudine ± 110 mV)

Receptorii, clasificarea lor: după localizare (membrană, nucleară), după mecanismul de desfăşurare a proceselor (iono- şi metaiotrope), după viteza de recepţie a semnalului (rapid, lent), după tipul de substanţe receptoare.

Receptorii Sunt ultimele formațiuni specializate menite să transforme energia diferitelor tipuri de stimuli în activitatea specifică a sistemului nervos.

Clasificare:

prin localizare

· membrana

nuclear

conform mecanismului de dezvoltare a procesului

· ionotrope (sunt canale membranare care se deschid sau se închid la legarea de un ligand. Curenții de ioni rezultați provoacă modificări ale diferenței de potențial transmembranar și, ca urmare, excitabilitatea celulei și, de asemenea, modifică concentrațiile intracelulare ale ionilor, care poate duce secundar la activarea sistemelor mediatoare intracelulare. Unul dintre cei mai complet studiati receptori ionotropi este receptorul n-colinergic.)

· metabotrop (asociat cu sisteme de mediatori intracelulari. Modificările conformației lor la legarea de un ligand duc la lansarea unei cascade de reacții biochimice și, în cele din urmă, la o schimbare a stării funcționale a celulei.)

prin viteza de recepție a semnalului

· rapid

· lent

după tipul de substanţe receptoare

· Chemoreceptori- percepe efectele substanțelor chimice dizolvate sau volatile.

· Osmoreceptori- percep modificări ale concentraţiei osmotice a lichidului (de obicei mediul intern).

· Mecanoreceptorii- percep stimulii mecanici (atingere, presiune, întindere, vibrații ale apei sau ale aerului etc.)

· Fotoreceptori- percepe lumina vizibilă și ultravioletă

· Termoreceptori- percepe o scădere (frig) sau creștere (căldură) a temperaturii

· Baroreceptori- percepe modificări ale presiunii

3. Receptorii ionotropi, receptorii metaboliți și varietățile acestora. Sisteme de mesageri secundari ai acțiunii receptorilor metabotropi (cAMP, cGMP, inozitol-3-fosfat, diacilglicerol, ioni de Ca++).

Există două tipuri de receptori pe membrana postsinaptică - ionotropi și metabotropi.

Ionotrop
În cazul în care receptor ionotrop molecula sensibilă conține nu numai un situs activ pentru legarea mediatorului, ci și un canal ionic. Influența „mesagerului primar” (mediator) asupra receptorului duce la deschiderea rapidă a canalului și la dezvoltarea potențialului postsinaptic.
Metabotrop
Când un mediator este atașat și receptorul metabotropic este excitat, metabolismul intracelular se modifică, de exemplu. cursul reacțiilor biochimice

Pe partea interioară a membranei, o serie de alte proteine ​​sunt atașate unui astfel de receptor, care efectuează funcții enzimatice și parțial de transmitere („intermediare”) (Fig.). Proteinele mediatoare sunt clasificate ca proteine ​​G. Sub influența unui receptor excitat, proteina G acționează asupra proteinei enzimatice, transferând-o de obicei într-o stare „de lucru”. Ca rezultat, se declanșează o reacție chimică: molecula precursor se transformă într-o moleculă semnal - un mesager secundar.

Orez. Schema structurii și funcționării receptorului metabotropic: 1 - mediator; 2 - receptor; 3 - canal ionic; 4 - intermediar secundar; 5 - enzimă; 6 - proteina G; → - sensul de transmitere a semnalului

Intermediari secundari - sunt molecule mici sau ioni capabili de miscare rapida care transmit un semnal in interiorul celulei. Acesta este modul în care se deosebesc de „mesagerii primari” - mediatori și hormoni care transmit informații de la celulă la celulă.

Cel mai cunoscut mesager secundar este cAMP (acid adenozin monofosforic ciclic), format din ATP de enzima adenilat ciclază. Similar cu acesta este cGMP (acidul guanozin monofosforic). Alți mesageri secundari importanți sunt inozitol trifosfatul și diacilglicerolul, formați din componente ale membranei celulare sub acțiunea enzimei fosfolipazei C. Rolul Ca 2+ pătrunde în celulă din exterior prin canale ionice sau eliberează din locuri speciale de depozitare din interiorul celulei. („depozitul de calciu”) este extrem de important. Recent, s-a acordat multă atenție mesagerului secundar NO (oxid nitric), care este capabil să transmită un semnal nu numai în interiorul unei celule, ci și între celule, traversând cu ușurință membrana, inclusiv de la un neuron postsinaptic la unul presinaptic.

Pasul final în conducerea unui semnal chimic este acțiunea unui al doilea mesager asupra unui canal ionic chimiosensibil. Acest efect are loc fie direct, fie prin legături intermediare suplimentare (enzime). În orice caz, canalul ionic se deschide și se dezvoltă un EPSP sau IPSP. Durata și amplitudinea primei lor faze vor fi determinate de cantitatea de mesager secundar, care depinde de cantitatea de mediator eliberat și de durata interacțiunii acestuia cu receptorul.

Astfel, mecanismul de transmitere a stimulului nervos utilizat de receptorii metabotropi include mai multe etape succesive. La fiecare dintre ele este posibilă reglarea (slăbirea sau întărirea) semnalului, ceea ce face ca reacția celulei postsinaptice să fie mai flexibilă și mai adaptată la condițiile actuale. În același timp, acest lucru duce și la o încetinire a procesului de transfer de informații

sistem cAMP

Fosfolipaza C

Metodă de numărare a leucocitelor din sânge.


4. Metodă de determinare a cantității de hemoglobină din sânge.



5.
Determinarea indicatorului de culoare a sângelui. Conținutul absolut de hemoglobină în eritrocite.



6. Metoda de determinare a vitezei de sedimentare a eritrocitelor (VSH).


7. Metodologia de determinare a grupelor sanguine.

Definiții ale coagulării sângelui conform lui Sukharev.

Necesar pentru munca: subiect de testare, capilar curat și uscat dintr-un dispozitiv Panchenkov, scarificator steril și pensetă, alcool, iod, vată.

Realizarea lucrarii:

1. Înțepați degetul și îndepărtați prima picătură de sânge cu un tampon de bumbac uscat.

2. Scufundați capătul capilarului într-o picătură de sânge fără a apăsa orificiul pe deget.

3. Coborând ușor capătul exterior al capilarului, extrageți 20-30 mm de sânge și mutați această coloană de sânge în mijloc.

4. Ținând capilarul cu două degete, balansați-l ușor în ambele direcții cu o amplitudine de 40-45 0 .

Mișcarea liberă a coloanei de sânge indică faptul că coagularea nu a avut loc încă. Mișcarea lentă a sângelui atunci când capilarul este înclinat caracterizează începutul coagulării, în timp ce mici cheaguri apar pe peretele interior al capilarului.

Momentul în care mișcarea coloanei de sânge în capilar se oprește complet corespunde debutului coagularii finale a sângelui. Conform metodei propuse, rata de coagulare a sângelui este normală: începutul coagulării are loc după 30 s - 2 minute, coagularea completă - după 3-5 minute.

9. Metodă de determinare a rezistenţei osmotice a eritrocitelor.

Scopul lucrării: familiarizați-vă cu proprietățile stabilității osmotice a globulelor roșii și efectuați o evaluare cantitativă a rezistenței acestora la soluțiile hipotonice.

Necesar pentru munca: opt eprubete curate și uscate, un suport, un cilindru gradat de 5-10 ml, o soluție de clorură de sodiu 1%, apă distilată, scarificatoare și pensete sterile, alcool, iod, vată, baghete de sticlă, pipete de măsurare.

Realizarea lucrarii:

1. Se toarnă o soluție de clorură de sodiu 1% în fiecare eprubetă într-o cantitate descrescătoare de la 0,6 la 0,15 ml, apoi se adaugă apă distilată la 1 ml în fiecare eprubetă. Numerotează eprubetele.

2. Adăugați o picătură de sânge în toate eprubetele folosind un capilar Sali. Este mai bine să începeți să adăugați sânge din eprubeta în care este plasată soluția cu cea mai mică concentrație și să vă urcați. Amestecați conținutul cu grijă, astfel încât să nu se formeze bule de aer.

3. Lăsați eprubetele într-un suport într-un loc bine luminat timp de 30-40 de minute, apoi examinați conținutul lor ( nu se scutura!). Analizați rezultatele.

4. Limitele (nivelul) rezistenței osmotice a eritrocitelor pot fi judecate după gradul de hemoliză a sângelui în diferite soluții hipotonice.

6. Marcați eprubetele care conțin:

· fără hemoliză;

· hemoliză parțială;

· hemoliză completă.

7. În concluzii, definiți limitele superioare și inferioare ale rezistenței eritrocitelor și trageți o concluzie despre corespondența rezultatelor obținute cu norma fiziologică.

Necesar pentru muncă s: scarificatoare, bile de vată, alcool, eter, camera de numărare a lui Goryaev, mixer (melanger) pentru numărarea leucocitelor, soluție de acid acetic 5%, colorată cu albastru de metilen, microscop. Obiect de studiu Uman.

Efectuarea lucrărilor: Camera de numărare este plasată la microscop și grila Goryaev este examinată mai întâi la mărire mică și apoi la mărire mare. Acoperiți camera cu un pahar de acoperire, frecându-și marginile de sticla camerei până când apar inelele curcubeului lui Newton. Lăsând camera sub microscop, degetul este străpuns folosind metoda descrisă anterior. Prima picătură de sânge care apare de pe deget este șters cu un tampon de vată. Vârful mixerului de leucocite este scufundat în a doua picătură, ținut vertical și sângele extras până la marcajul 1, asigurându-vă că nu pătrund bule de aer în capilar. Ștergeți capătul capilarului cu hârtie de filtru și repede, înainte ca sângele să se coaguleze, transferați-l într-o cană cu o soluție de acid acetic 5%, continuând să țineți mixerul pe verticală. Soluția este extrasă la marcajul 11 ​​(adică sângele este diluat de 10 ori), după care mixerul este transferat într-o poziție orizontală și plasat pe masă.

Pentru a număra leucocitele, luați melangeurul umplut, strângând capătul inferior cu un deget, îndepărtați bulbul de cauciuc și, ținând ambele capete ale mixerului cu al treilea și primul degete, amestecați sângele timp de 1 minut. În acest caz, celulele roșii din sânge sunt distruse și doar leucocitele, sau mai bine zis nucleele lor, rămân în câmpul vizual. Deoarece acidul acetic este colorat cu albastru de metidenă, nucleii leucocitelor devin mai vizibili. Trei picături sunt eliberate din mixer pe vată, iar a patra este aplicată pe platforma din mijloc a camerei de la marginea geamului de acoperire. Prin forțe capilare, picătura în sine este atrasă în capacul de sticlă și umple camera. Excesul de soluție de sânge curge în șanț. Dacă aerul intră în plasă sau există exces de soluție pe platformele laterale, camera trebuie clătită cu apă distilată, uscată și umplută din nou. Camera umplută este plasată la microscop și, dacă elementele formate sunt situate uniform (ceea ce este un indicator al amestecării bune a sângelui), acestea încep să conteze. Numărați numărul de leucocite în 25 de pătrate mari (împărțite în 400 de mici). Numărarea se efectuează într-un pătrat mic în rânduri (de sus în jos). Pentru a evita dubla numărare a celulelor situate la granița dintre pătratele mici, se aplică regula lui Egorov: „un pătrat dat include celulele roșii din sânge aflate atât în ​​interiorul pătratului, cât și pe marginile sale din stânga și de sus; celulele roșii din sânge situate pe marginile drepte și inferioare nu aparțin acestui pătrat.” Numărând suma leucocitelor din 25 de pătrate mari (adică 400 de pătrate mici), se găsește numărul mediu aritmetic de leucocite dintr-un pătrat mic. Știind că volumul spațiului camerei de deasupra unui pătrat mic este egal cu 1/4000 mm 3 , înmulțiți numărul găsit cu 4000. Se obține numărul de leucocite în 1 mm 3 de sânge diluat. Înmulțind cu valoarea de diluție (10), se obține numărul de leucocite din 1 mm 3 de sânge integral. Astfel, formula de calcul a numărului de leucocite este următoarea: X = (L x 4000 x 10)/400, unde x este numărul dorit de leucocite în 1 mm 3 de sânge integral, L este suma leucocitelor din 400 pătrate mici, 400 este numărul de pătrate mici în care s-a făcut o numărare, 10 - diluție de sânge. Apoi se înregistrează numărul rezultat de leucocite în termeni de 1 litru de sânge, adică. numărul de mii de leucocite găsite în 1 mm 3 se înmulțește cu 10 9.

Înregistrarea rezultatelor și evaluarea acestora: Notați câte leucocite sunt conținute în 1 litru de sânge testat. Comparați rezultatele obținute cu norma. La adulți, această cifră este de 6-8 mii pe 1 mm 3 sau (6,0 - 9,0) x10 9.

Sfârșitul lucrării -

Acest subiect aparține secțiunii:

Materiale educaționale și metodologice pentru modulul II

Universitatea Națională de Medicină din Odesa.. Departamentul de Fiziologie.. materiale educaționale și metodologice..

Dacă aveți nevoie de material suplimentar pe această temă, sau nu ați găsit ceea ce căutați, vă recomandăm să utilizați căutarea în baza noastră de date de lucrări:

Ce vom face cu materialul primit:

Dacă acest material ți-a fost util, îl poți salva pe pagina ta de pe rețelele sociale:

Toate subiectele din această secțiune:

Sistemul sanguin
Obiective specifice: 1. Cunoașterea compoziției și funcțiilor sistemului sanguin, a mecanismelor de reglare a acestuia pe baza analizei parametrilor homeostaziei (volumul sanguin, echilibrul acido-bazic, osmo).

Caracteristicile generale ale sistemului sanguin. Studiul funcțiilor și proprietăților fizice și chimice ale sângelui
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea compoziției sângelui și a mecanismului de menținere a constantelor sale de bază este necesară pentru a înțelege rolul sângelui ca mediu intern al organismului.

Metodă de obținere a sângelui pentru analiză la om
Pentru lucru ai nevoie de: scarificatoare, bile de bumbac, alcool, eter. Obiectul cercetării este o persoană.

Efectuarea muncii: A nu primi
Metodologie pentru determinarea raportului volumetric dintre elementele formate și plasmă (hematocrit)

Pentru lucru ai nevoie de: scarificatoare, bile de bumbac, alcool, eter, solutie de citrat de sodiu 4%, centrifuga, capilare din sticla gradata. Obiectul de studiu -
Metodă pentru determinarea prezenței și cantității de proteine ​​în plasma sanguină

Pentru munca ai nevoie de: plasma sanguina, solutie de citrat de sodiu 4%, refractometru, apa distilata, masa Reis. Obiectul cercetării este o persoană.
Metodă de studiere a proprietăților tampon ale serului sanguin conform Friedenthal

Pentru muncă aveți nevoie de: probe de ser de sânge diluate de 10 ori; apă distilată; soluție de HCI 0,1 N; soluție de KOH 0,01 N; indicatori - fenolftaleină, metil portocală; s 4 dimensional
Metodă de pregătire a unui frotiu de sânge și de studiere la microscop

Pentru lucru ai nevoie de: scarificatoare, bile de bumbac, alcool, eter, lame de sticla. Obiectul cercetării este o persoană.
Fiziologia globulelor roșii și a hemoglobinei

Caracteristicile motivaționale ale subiectului Cunoașterea funcțiilor globulelor roșii, hemoglobinei și rezistența lor osmotică este necesară pentru a înțelege rolul sângelui ca mediu intern al organismului.
Metoda de numărare a celulelor roșii din sânge în camera de numărare a lui Goryaev

Metodă de calcul al indicelui de culoare al sângelui

Metodă pentru determinarea vitezei de sedimentare a eritrocitelor (ESR)
Pentru lucru aveți nevoie de: scarificatoare, bile de bumbac, alcool, soluție de citrat de sodiu 5%, capilar Panchenkov, suport Panchenkov, sticlă de ceas sau eprubetă Vidal. Obiect studiat

Metodă de determinare a stabilității osmotice a eritrocitelor
Pentru lucru aveți nevoie de: un suport cu 18 eprubete, soluții de clorură de sodiu în concentrații descrescătoare de 0,9%, 0,85%, 0,8% etc. până la 0,1% soluție), eprubetă cu apă distilată, eprubetă

Metodologie pentru determinarea conținutului mediu de hemoglobină într-un globul roșu (SHE)
Pentru muncă aveți nevoie de: indicatori obținuți anterior pentru nivelul hemoglobinei și numărul de globule roșii dintr-o probă de analiză de sânge. Obiectul cercetării este o persoană.

Studiul proprietăților protectoare ale sângelui. funcțiile leucocitelor. Conceptul de imunitate, tipurile sale
Caracteristicile motivaționale ale subiectului Este necesară cunoașterea proprietăților protectoare ale sângelui și a funcțiilor leucocitelor pentru a înțelege mecanismele reacțiilor imunologice în condițiile de mediu în schimbare.

Metodă de calcul a formulei leucocitelor într-un frotiu de sânge
Pentru muncă aveți nevoie de: un frotiu de sânge pregătit în prealabil, colorat conform Romanovsky-Giemsa, un microscop, ulei de imersie. Obiectul cercetării este o persoană.

Tipuri și mecanisme de hemostază. Fiziologia trombocitelor
Caracteristicile motivaționale ale subiectului Cunoașterea proprietăților hemostatice ale funcțiilor sângelui și trombocitelor este necesară pentru a înțelege mecanismele de formare a trombului și menținerea sângelui în stare lichidă.

Tehnica de înregistrare grafică a procesului de coagulare a sângelui (tromboelastografia)
Pentru lucru ai nevoie de: tromboelastograf, scarificatoare, bile de bumbac, alcool, un capilar special. Obiectul cercetării este o persoană.

Metodologie de înregistrare a procesului de coagulare și recalcificare a plasmei cu ajutorul coagulografiei
Pentru lucru aveți nevoie de: coagulograf, scarificatoare, bile de bumbac, alcool, capilar special, soluție CaCL 1,29%, plasmă de citrat Obiectul de studiu este o persoană.

Determinarea timpului de coagulare a sângelui folosind metoda fonio

Determinarea timpului de coagulare a sângelui folosind metoda Lee și White
Pentru muncă ai nevoie de: scarificatoare, bile de bumbac, alcool, eprubetă, cronometru. Obiectul cercetării este o persoană.

Realizarea lucrarii:
Pentru muncă ai nevoie de: scarificatoare, bile de bumbac, alcool, eprubetă, cronometru. Obiectul cercetării este o persoană.


Determinarea timpului de sângerare folosind metoda Duke

1. Un băiețel sănătos de 5 ani, care mânuia neglijent un cuțit, și-a tăiat degetul și sângera. Aproximativ cât va dura sângerarea?
Caracteristicile motivaționale ale subiectului Cunoașterea doctrinei grupelor de sânge este necesară pentru a înțelege principiile transfuziei de sânge și metodele de efectuare a testelor de compatibilitate înainte de transfuzie.

Metodă de determinare a grupelor sanguine conform sistemului ABO folosind seruri standard
Serurile standard sunt plasmă purificată din fabrică de la donatori de diferite grupe de sânge, care nu conțin fibrinogen, cu o concentrație mare de anticorpi la unul sau mai mulți anticorpi.

Posibile erori în determinarea grupelor de sânge
Absența aglutinarii poate fi observată ca urmare a: - unui raport eronat dintre sângele testat și serul standard - un titru slab al serurilor standard

Metodă de determinare a grupelor sanguine conform sistemului AVO folosind zoliclone
Zoliclonele anti-A și anti-B sunt imunoglobuline specifice, adică. anticorpi (aglutinine) la antigenele de grup A și B, care sunt formate de limfocitele B monoclonale ca răspuns la

Activități efectuate înainte de transfuzia de sânge
1. Determinarea compatibilității de grup a sângelui primitorului și al donatorului 2. Determinarea compatibilității individuale a sângelui primitorului și al donatorului 3. Determinarea compatibilității sângelui primitorului

Abilități practice în fiziologia sistemului sanguin
Caracteristicile motivaționale ale subiectului. Consolidarea abilităților practice în metode de studiere a stărilor funcționale ale sistemului sanguin, utilizate în scopul diagnosticării și tratamentului în clinică

Studiul variabilității ritmului cardiac în repaus la persoanele sănătoase cu construirea unei curbe de distribuție normală pentru această caracteristică
Se știe că ritmul cardiac este determinat de activitatea automată a diferitelor părți ale sistemului de conducere miocardic. În condiții normale, stimulatorul cardiac principal este sinoatrial

funcția de pompare a inimii. ciclu cardiac, metode de studiu al acestuia
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea structurii ciclului cardiac și a mecanismelor fazelor sale este necesară pentru a înțelege procesele de funcționare a miocardului, care asigură alimentarea cu sânge.

Determinarea duratei ciclului cardiac la o persoană prin puls în repaus și în timpul activității fizice
Ritmul cardiac al unei persoane aflate în stare de repaus fizic și emoțional fluctuează între 60-80 bătăi/min. În timpul activității fizice, ritmul cardiac

Evaluarea și analiza rezultatelor electrocardiografiei
O electrocardiogramă este o înregistrare grafică a diferenței de potențial a cardiomiocitelor, care reflectă procesul de propagare a excitației prin sistemul de conducere către miocard. Componentele principale ale ECG - interval

Studiul reglării nervoase a activității inimii
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de reglare a activității cardiace este necesară pentru a înțelege procesele funcționării miocardice sub influența diferitelor sisteme nervoase.

Influența reflexului Danini-Aschner asupra ritmului cardiac la om
La oameni, atunci când se aplică presiune asupra globilor oculari, ritmul cardiac poate scădea. Acest efect se explică prin excitarea reflexă a nucleilor nervului vag.

Necesar pentru muncă
Studiul reglării umorale a activității inimii

Caracteristicile motivaționale ale subiectului Cunoașterea mecanismelor de reglare a activității cardiace este necesară pentru a înțelege funcționarea miocardului sub influența diferitelor substanțe umorale.
circulatie sistemica. Legile hemodinamicii, rolul vaselor de sânge în circulația sângelui. Test de tensiune arterială

Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea principiilor de bază ale hemodinamicii este necesară pentru a oferi posibile modalități de menținere a homeostaziei în diferite stări funcționale.
Măsurarea tensiunii arteriale la om folosind metoda de palpare Riva Rocci

Pentru funcționare este necesar un tensiometru. Obiectul cercetării este o persoană.
Efectuarea lucrărilor. Aplicați manșeta pe umăr așa cum este indicat

Măsurarea tensiunii arteriale (TA) la oameni folosind metoda Korotkov
Valoarea tensiunii arteriale este unul dintre indicatorii prin care se poate judeca activitatea inimii și starea vaselor de sânge ale corpului. Metoda auscultatorie Korotkoff de măsurare a tensiunii arteriale se bazează pe auz

Studiul reglării circulației sanguine. Reglarea tonusului vascular
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de reglare a tensiunii arteriale este necesară pentru a înțelege procesele de menținere a homeostaziei sub influența diferitelor sisteme nervoase.

Studiul modificărilor tensiunii arteriale și ale ritmului cardiac la oameni în timpul activității fizice
Activitatea fizică afectează activitatea sistemului cardiovascular, de obicei crescând presiunea sistolice și ritmul cardiac (FC). Modificările acestor indicatori depind de modul în care

Studiul modificărilor tensiunii arteriale și ale ritmului cardiac la oameni atunci când sunt expuși la frig
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor microcirculației și a caracteristicilor fluxului sanguin regional este necesară pentru a înțelege procesele de menținere a homeostaziei în condiții de operare.

Observarea fluxului sanguin venos
Funcția principală a sistemului venos este de a returna sângele la inimă, astfel încât sângele curge prin vene în direcția de la periferie spre centru, spre inimă. Acest lucru este facilitat de factori precum

Studiul circulației limfatice
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de funcționare a sistemului limfatic este necesară pentru înțelegerea proceselor metabolice din țesuturi și a conexiunii dinamice dintre celule.

Studiul efectelor stimulatoare ale iritației gastrice la o broaște spinală asupra funcționării inimii sale limfatice
SARCINI DE TEST PENTRU AUTOCONTROLUL NIVELULUI DE CUNOAȘTERE: 1. Unde ar trebui plasat cateterul într-un animal pentru a colecta limfa din ductul limfatic toracic?

O.
abilități practice în fiziologia sistemului circulator

Caracteristicile motivaționale ale temei Consolidarea abilităților practice în metode de studiere a stărilor funcționale ale sistemului circulator, utilizate în scopul diagnosticării și tratamentului.
Caracteristicile generale ale sistemului respirator. Analiza spirogramei


Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor respirației externe și analiza indicatorilor acesteia sunt necesare pentru înțelegerea și evaluarea procesului respirator în diferite stări funcționale.

1. Studiul capacității vitale a plămânilor cu ajutorul spirometriei.
2. Studiul parametrilor respiratori externi folosind spirografie.

Studiu de viață
Examinarea respirației externe. Studiul mecanismului de inspirație și expirație

Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de inhalare și expirare este necesară pentru a evalua starea organelor respiratorii în practica medicală.
Obiectivele lecției: cunoștințe

Studiul vitezei maxime de inspirație și expirare în timpul respirației forțate (pneumotahometrie)
Măsurarea vitezei maxime de inspirație și expirare în timpul respirației forțate (pneumotahometrie) este cea mai simplă metodă de diagnosticare a obstrucției bronșice și depinde atât de puterea respiratorie.

Transportul de gaze prin sânge, semnificație pentru organism
2. Rolul hemoglobinei și mioglobinei în respirație.

3. Curba de disociere a oxihemoglobinei. Factori care influențează formarea și disocierea oxihemoglobinei.
4. Capacitatea de oxigen a sângelui, UI

D. Apariția distrugerii țesuturilor
E. Conduce la dezvoltarea hipoxiei tisulare 2. Indicatorul care reflectă poziția curbei de disociere a oxihemoglobinei este... A. PO2 la 100% la

E. Toate răspunsurile sunt incorecte
Răspunsuri: 1-B. 2-C. 3-D. 4-C. 5-C. 6-C. 7-C. 8-A. 9-D. 10-C.

Sarcini situaționale: 1. La un pacient
studiul reglării nervoase a respirației

Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de reglare a respirației este necesară pentru a înțelege procesele de funcționare a sistemului respirator sub influența diferitelor neurogeni.
studii de reglare umorală a respirației

Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de reglare respiratorie este necesară pentru a înțelege procesele de funcționare a sistemului respirator sub influența diferitelor umorale.
E. adâncimea şi frecvenţa respiraţiei vor scădea

Răspunsuri: 1-D. 2-B. 3-A. 4-C. 5-D. 6-D. 7-C. 8-A. 9-D. 10-C.
SARCINI DE TESTARE PENTRU AUTOCONTROLUL NIVELULUI DE CUNOAȘTERE conform programului Krok 1. Ce

abilități practice în fiziologia aparatului respirator
Caracteristicile motivaționale ale temei.. Este necesară consolidarea abilităților practice în metodele de cercetare a aparatului respirator folosit în scopul diagnosticării și tratamentului în clinică.

Metabolismul energetic
Obiective specifice: 1. Trageți concluzii despre intensitatea metabolismului pe baza unei analize a costurilor energetice care caracterizează metabolismul bazal.

2. Trageți concluzii despre cele predominante
metabolismul energetic și bazal și metodele de cercetare ale acestuia

Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea proceselor metabolice și a metodelor de determinare a acesteia este necesară pentru a înțelege unitatea și echilibrul proceselor anabolice și catabolice.
Studiul stării metabolismului uman prin analiza indicelui de masă corporală

Studiul prezenței receptorilor pielii de căldură și frig
Termoreceptorii sunt localizați mai adânc în piele decât cei tactili. Stimulii rece sunt percepuți de baloanele lui Krause, iar stimulii de căldură de corpusculii lui Ruffini. Densitatea dispunerii lor: 10-13 la rece și 1-2 termice

Sistemul digestiv
Obiective specifice: 1. Interpretarea conceptelor de aparat digestiv si a mecanismelor de reglare a functiilor fiziologice ale acestuia - secretorie, motorii, de absorbtie.

2. Faceți o concluzie
Studiul pragurilor gustative

Există patru senzații gustative „primare”: dulce, acru, sărat, amar. Pragul de sensibilitate la gust este concentrația minimă a substanței de testat care provoacă
Studiul câmpurilor gustative ale limbii

Pentru muncă aveți nevoie de: soluție de zahăr 10%, soluție de NaCl 10%, soluție de acid citric 1%, soluție de clorhidrat de chinină 0,5%, picătură pentru ochi, pahar cu apă. Obiect de studiu
Studiul efectului precursor al salivei asupra amidonului

Pentru muncă aveți nevoie de: 6 ml de salivă umană, soluție 1% de amidon crud și fiert, reactivi Fehling II, baie de apă, 6 eprubete, lampă cu alcool, pahar cu apă. Obiect de studiu
Digestia în stomac. Metode pentru studiul digestiei în stomac

Caracteristicile motivaționale ale subiectului Cunoașterea mecanismelor de digestie în cavitatea stomacului este necesară pentru a înțelege mecanismele de funcționare a sistemului nutrițional în diferite condiții funcționale.
Evaluarea funcției secretoare gastrice pe baza rezultatelor analizei sucului gastric

Pentru muncă aveți nevoie de: rezultatele unui studiu al sucului gastric uman. Obiectul cercetării este o persoană.
Efectuarea lucrărilor: Utilizarea

Sarcini de testare pentru auto-monitorizarea nivelului de cunoștințe
1. Pacientul a suferit rezecție gastrică cu îndepărtarea regiunii pilorice. Ce procese din tractul gastrointestinal au fost perturbate?

A. Tranziția chimului în duoden B. Peristaltismul
Digestia în duoden (DU). Rolul sucului pancreatic și al bilei în procesul digestiv

Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de digestie în duoden este necesară pentru a înțelege mecanismele de funcționare a sistemului nutrițional sub diferite funcții.
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de digestie în intestine este necesară pentru a înțelege mecanismele de funcționare a sistemului nutrițional în diferite condiții funcționale.

Program de lucru practic la clasă
1. Construirea unui circuit de reglare a proceselor de foame și sațietate.

SARCINI DE TEST PENTRU AUTOCONTROLUL NIVELULUI DE CUNOAȘTERE: 1. Pacientul are sinteza de enterokinaze afectată. Cum
activitatea motorie a stomacului și a intestinelor. Procese de absorbție

Program de lucru practic la clasă
Caracteristicile motivaționale ale subiectului Cunoașterea mecanismelor de absorbție și a activității motorii a tractului gastrointestinal este necesară pentru a înțelege mecanismele de funcționare a sistemului.

1. Construirea unui circuit de reglare a constanței compoziției nutrienților în mediul intern al organismului.
SARCINI DE TEST PENTRU AUTOCONTROLUL NIVELULUI DE CUNOAȘTERE: 1.

Abilități practice în fiziologia sistemului digestiv
Caracteristicile motivaționale ale subiectului. Consolidarea abilităților practice în metode de studiere a stărilor funcționale ale organelor sistemului digestiv, utilizate în scopul diagnosticării și l

Sistem de extractie
Obiective specifice: 1. Explicați conceptele sistemului excretor și mecanismele de reglare a homeostaziei cu participarea acesteia pe baza analizei constantelor - volumul sanguin circulant, concentrația

Program de lucru practic la clasă
caracteristicile generale și funcțiile sistemului de excreție. Rolul rinichilor în procesele de excreție, mecanismul de formare a urinei

Caracteristicile motivaționale ale subiectului Cunoașterea mecanismelor de formare a urinei este necesară pentru a înțelege funcționarea sistemului excretor în diferite condiții funcționale.
1. Calculați rata de filtrare glomerulară folosind datele din fișă. Trageți o concluzie.

Program de lucru practic la clasă
2. Determinați cantitatea de reabsorbție de apă în nefron folosind datele din fișă

reglarea funcției renale
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de reglare a funcțiilor rinichilor este necesară pentru a înțelege procesele de funcționare a sistemului pentru distingerea diferitelor stări funcționale.

Program de lucru practic la clasă
1. Realizarea unui circuit de reglare a procesului de urinare.

La reglarea procesului de urinare, feedback-ul negativ și pozitiv interacționează, ceea ce asigură eficient
10. În ce parte a nefronului este reabsorbită în principal glucoza?

A. proximal B. distal C. canal colector D. ansa de Henle
aptitudini practice în fiziologia sistemului excretor

Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea abilităților practice în studierea stării funcționale a organelor sistemului urinar este necesară pentru a înțelege mecanismele de funcționare.
E. 60-100 ml

Răspunsuri: 1-D., 2-B., 3-B., 4-D., 5-C., 6-E., 7-C., 8-D., 9-C., 10-D. .
Sarcini situaționale: 1. În caz de boală

Fiziologia sângelui
1. Caracteristicile generale ale sistemului sanguin, compoziția și funcțiile sângelui.

2. Conceptul de hemostază, mecanisme de hemostază și mecanisme de reglare a acesteia.
3. Electroliții din plasmă sanguină, cantitatea acestora. DESPRE

Potențialul de acțiune al cardiomiocitelor ventriculare tipice, mecanismul apariției acestuia, reprezentarea grafică, rolul fiziologic
8. Relații de timp între AP și contracția miocardică unică.

9. Perioadele refractare în timpul dezvoltării AP ale cardiomiocitelor tipice, semnificația lor.
10. Împerecherea de excitație și co

Metabolism și termoreglare
17. Surse și modalități de utilizare a energiei în corpul uman.

18. Metode de determinare a consumului uman de energie. Coeficientul respirator.

19. Metabolismul de bază și condițiile pentru determinarea acestuia

Digestie 27. Definiți și descrieți structura sistemului digestiv.

28. Enumerați principalele funcții ale digestiei.

    29. Enumerați etapele procesării alimentelor în cavitatea bucală.

    soluție 3% de acid acetic, la care se adaugă câteva picături de violet de metil sau albastru de metilen;

    camera de numarare;

    microscop.

Mixerul pentru leucocite diferă de cel pentru eritrocite prin faptul că are un lumen capilar mai larg și un rezervor mai mic. Există trei semne pe mixer: 0,5, 1,0 și 11. Acest lucru vă permite să diluați sângele de 10 sau 20 de ori (de obicei, diluați de 20 de ori).

Progresul studiului: Când se ia sânge pentru numărarea leucocitelor, sângele rămas este mai întâi îndepărtat de pe piele cu un tampon de vată și, strângând ușor degetul, se eliberează o picătură proaspătă de sânge. Când se lucrează cu mixere, sângele este extras la semnul 0,5, apoi se diluează cu o soluție de acid acetic 3% până la semnul 11. Se agită energic timp de 3 minute, după care se scurg 1-2 picături și se umple camera de numărare. Când lucrați cu eprubete pentru numărarea leucocitelor, turnați 0,4 ml de soluție de acid acetic 3% și eliberați 0,02 ml de sânge în ea, măsurat cu o pipetă de la un hemometru Sali. Agitați bine eprubetele, apoi coborâți pipeta în lichid și, după ce ați colectat conținutul, umpleți camera de numărare. Deoarece există mult mai puține leucocite decât celulele roșii din sânge, pentru a obține un rezultat fiabil și precis, numărarea se efectuează în 100 de pătrate mari (negrafate). De obicei, există 1-2 leucocite într-un pătrat mare. Numărul de leucocite din 1 μl de sânge este calculat în mod similar cu calculul numărului de eritrocite folosind formula

X = (A x 4000 x B)/B,

unde X este numărul de leucocite din 1 μl de sânge; A este numărul de leucocite numărate în 1600 de pătrate mici; B - numărul de pătrate mici numărate (1600); 4000 este o valoare cu care, atunci când este înmulțită, obținem numărul de celule în 1 µl.

Interpretarea datelor obtinute. Număr normal de globule albe: 4,0 – 9,0 x 10 9 /l. O scădere a numărului lor în sânge se numește leucopenie, o creștere se numește leucocitoză.

Leucocitoza pot fi absolute (adevărate) și relative (redistributive).

Leucocitoză absolută - observată în procese inflamatorii acute, necroză tisulară, infecții bacteriene acute (cu excepția febrei tifoide, bruceloză, tularemie etc.), afecțiuni alergice, tumori maligne (cu distrugere tisulară), leziuni ale craniului închis și hemoragii cerebrale, diabet. și comă uremică, șoc, pierdere acută de sânge, ca reacție primară în boala de radiații. O creștere semnificativă a numărului de leucocite are loc în leucemie.

Relativ (redistribuirea) este o consecință a pătrunderii leucocitelor în fluxul sanguin din organele care servesc drept depozit pentru aceasta. Aceasta apare după masă (leucocitoză alimentară), băi calde și reci, emoții puternice (leucocitoză vegetativ-vasculară), muncă musculară intensă (leucocitoză miogenă) etc.

Leucopenie. Leucopenia este considerată un indicator al inhibării abilității funcționale a măduvei osoase ca urmare a expunerii la substanțe toxice (arsen, benzen etc.), anumite medicamente (sulfonamide, cloramfenicol, butadionă, imuran, ciclofosfamidă etc.), virusuri (gripa, hepatită virală, rujeolă, etc.), microbi (febra tifoidă, bruceloză etc.), radiații ionizante, raze X și hipersplenism (creșterea funcției splinei).

Leucocitoza și leucopenia sunt rareori caracterizate printr-o creștere (scădere) proporțională a numărului total de leucocite de toate tipurile (de exemplu, leucocitoză cu îngroșare a sângelui); în majoritatea cazurilor există o creștere (scădere) a numărului oricărui tip de celulă, prin urmare termenii „neutrofilie”, „neutropenie”, „limfocitoză”, „limfopenie”, „eozinofilie”, „eozinopenie”, „monocitoză” , se folosesc „monocitopenie”, „bazofilie”.

Atunci când se evaluează clinic modificările numărului de leucocite, se acordă o mare importanță procentului de forme individuale de leucocite, adică formula leucocitelor.

Formula de leucocite a sângelui unei persoane sănătoase:

Mărimea relativă Mărimea absolută

Bazofile……………………….0-1% 0-0,0650 x 10 9 /l

Eozinofile………………………….0,5-5% 0,02-0,30 x 109/l

Neutrofile: - mielocite…………0% absente

Metamielocite……0% absente

Tijă…...1-6% 0,040-0,300 x 10 9 /l

Segmentat….47-72% 2,0-5,5 x 10 9 /l

Limfocite…………………………….19-37% 1,2-3,0 x 10 9 /l

Monocite………………………….3-11% 0,09-0,6 x 10 9 /l

Formula de leucocite este numărată în frotiuri colorate de sânge periferic. Pentru a interpreta corect rezultatele unui studiu cu formula de leucocite, se recomandă numărarea în cantități absolute, mai degrabă decât în ​​cantități relative. Cele mai comune metode de colorare a frotiurilor sunt Romanovsky-Giemsa și Pappenheim. Cel puțin 200 de celule sunt numărate sub imersie și apoi se calculează procentul de tipuri individuale de leucocite. Analiza leucogramei, luând în considerare alți parametri sanguini și tabloul clinic, este o metodă valoroasă de examinare care ajută la stabilirea diagnosticului și la determinarea prognosticului bolii.

Principalele cauze ale neutrofiliei.

    Infecții bacteriene acute - localizate și generalizate.

    Inflamație sau necroză a țesuturilor.

    Boli mieloproliferative.

    Intoxicaţie.

    Efecte medicinale (corticosteroizi).

    Sângerare acută.

Principalele cauze ale neutropeniei.

    Infecții – bacteriene (febră tifoidă, bruceloză, tularemie, febră paratifoidă) și virale (hepatită infecțioasă, rujeolă, gripă, rubeolă și altele).

    Efecte mielotoxice și suprimarea granulocitopoiezei (radiații ionizante; agenți chimici - benzen, anilină, DDT; efecte medicinale - citostatice și imunosupresoare; vitamina B 12 - anemie cu deficit de folat, leucemie aleucemică acută, anemie aplastică).

    Impactul anticorpilor (forme imune) - hipersensibilitate la medicamente, boli autoimune (LES, artrită reumatoidă, leucemie limfocitară cronică), manifestări izoimune (boala hemolitică a nou-născutului).

    Redistribuire și depunere în organe - stări de șoc, boli cu splenomegalie și hipersplenism.

    Forme ereditare (neutropenie cronică benignă familială).

Principalele cauze ale eozinofiliei.

    Boli alergice.

    Leziuni cronice ale pielii - psoriazis, pemfigus, eczeme.

    Tumori (variante eozinofile ale leucemiei).

    Alte boli sunt endocardita fibroplastică Loeffler, scarlatina.

    În faza de recuperare pentru infecții și boli inflamatorii (semn de prognostic favorabil).

Cauzele eozinopeniei (aneozinofilie).

    Creșterea activității adrenocorticosteroizilor în organism.

    Febra tifoidă.

Principalele cauze ale bazofiliei:

    Leucemie mieloidă cronică și eritremie.

Principalele cauze ale monocitozei.

    Infecții bacteriene subacute și cronice.

    Hemoblastoze – leucemie monocitară, limfogranulomatoză, limfoame.

    Alte afectiuni – LES, sarcoidoza, artrita reumatoida, monocitoza infectioasa; în perioada de recuperare din infecții, la recuperarea din agranulocitoză, după splenectomie.

O scădere a numărului de monocite este importantă în principal atunci când se evaluează raportul limfocite-monocite în tuberculoza pulmonară.

Principalele cauze ale limfocitozei.

    Infecții - virale acute (mononucleoză infecțioasă, rujeolă, rubeolă, varicela), bacteriene cronice (tuberculoză, sifilis, bruceloză), protozoare (toxoplasmoză).

    Hemoblastoze (leucemie limfocitară, limfoame).

    Alte boli sunt hipertiroidismul, boala Addison, anemia cu deficit de vitamina B 12-folat, anemia hipo- și aplastică.

Limfocitopenie observat în LES, limfogranulomatoză, tuberculoză pe scară largă a ganglionilor limfatici, insuficiență renală în stadiu terminal, boala acută de radiații, stări de imunodeficiență și administrarea de glucocorticoizi.

O creștere sau scădere a numărului anumitor tipuri de leucocite din sânge poate fi relativă sau absolută. Dacă se modifică doar procentul unuia sau altui tip de leucocite, atunci apar neutrofilie relativă, eozinopenie relativă etc. O creștere sau scădere a conținutului absolut al oricărui tip de leucocite, adică numărul acestor celule pe unitatea de volum de sânge, se numește neutrofilie absolută, eozinopenie absolută etc.

O schimbare a formulei spre stânga (o creștere a numărului de forme tinere de neutrofile) este un semn de inflamație sau un proces necrotic în organism.

O schimbare a formulei leucocitelor spre dreapta este caracteristică bolii de radiații și anemiei cu deficit de vitamina B 12-folat.

Absența sau scăderea semnificativă a numărului tuturor tipurilor de leucocite granulare - granulocite (neutrofile, eozinofile, bazofile) se numește agranulocitoză. În funcție de mecanismul de apariție, se face distincția între mielotoxice (expunerea la radiații ionizante, administrarea de citostatice) și imun (agranulocitoză haptenică și autoimună).

Echipament: microscop, camera lui Goryaev, pipetă, capilar din hemometrul lui Sali, eprubetă cu capac de cauciuc.

Reactivi: Lichid Turk (100 ml soluție de acid acetic 5% și 1 ml soluție de violet de gențiană sau albastru de metilen 1%) alcool, ulei de imersie.

Camera Goryaev este o lamă groasă de sticlă, cu patru caneluri în partea de mijloc, între care se află trei platforme înguste, al căror mijloc este cu 0,1 mm mai jos decât cele laterale și este împărțit în jumătate de o canelură transversală. Pe ambele părți ale acestei caneluri există grile aplicate pe sticlă. Grila lui Goryaev constă din 225 de pătrate mari, dintre care 25 sunt căptușite cu linii verticale și orizontale în 16 pătrate mici. Leucocitele sunt numărate într-o cameră de numărare Goryaev sub un microscop cu mărire redusă în 100 de pătrate mari nemarcate. Un pătrat mare este egal cu 16 pătrate mici, ceea ce corespunde cu 100 x 16 = 1600 pătrate mici. Unitatea de referință este un pătrat mic. Latura sa este de 1/20 mm, zona 1/20 * 1/20 = 1/400 mm 2. Volumul de sânge care se potrivește deasupra pătratului mic este de 1/400 mm 2 *1/10 mm = 1/4000 mm 3 (1/10 mm este înălțimea stratului de sânge). din 225 de pătrate mari

Progresul lucrărilor. Frecați capacul de sticlă pe camera Goryaev până când apar inele de curcubeu.

Setați mărirea microscopului la 280 de ori (ocular la 7, obiectiv la 40). Așezați camera pe scena microscopului, găsiți grilele și examinați-le.

Cu ajutorul unei pipete, se iau 0,4 ml de lichid Turk (soluție de acid acetic 5%, colorată cu albastru de metilen) și se toarnă într-o eprubetă.

Atrageți sânge în capilar de la hemometrul Sali până la semn (0,02 ml); ștergeți vârful capilarului cu vată; coborâți capilarul într-o eprubetă cu lichid Turk; suflați sânge într-o eprubetă; Clătiți capilarul eliminând această soluție de diluant de două ori. Închideți eprubeta cu un dop de cauciuc și amestecați conținutul. Atrageți conținutul eprubetei în capilar. Eliberați o picătură din capilar pe placa de mijloc sub o sticlă de acoperire de sol în camera Goryaev (bulele de aer nu ar trebui să intre sub geamul de acoperire). Lăsați timp de 1 minut pentru a permite celulelor sanguine să se stabilească.

Numărați numărul de globule albe din 100 de pătrate mari (sau 1600 de pătrate mici). Se iau în considerare celulele situate în interiorul fiecărui pătrat mic, pe laturile stângi și superioare ale fiecărui pătrat. Nu conta pe laturile inferioare si dreapta ale patratului, pentru ca numărul lor este luat în considerare la numărarea leucocitelor pătratului următor.

X=(A*4000*20)/1600, unde

A – numărul de leucocite în 100 de pătrate mari,

4000 este coeficientul de reducere a volumului la 1 mm 3 (1/4000 mm 3 este volumul unui pătrat mic),

20 – factor de diluție al sângelui cu un volum de 0,02 ml,

1600 este numărul de pătrate mici.

În practică, pentru a obține conținutul real de leucocite în 1 μl de sânge, este suficient să împărțiți numărul obținut în timpul numărării la jumătate și să atribuiți 2 zerouri (sau împărțiți numărul calculat de celule sanguine la 50), eroarea metodei. este ± 7%.

De exemplu, se numără 160 de leucocite, apoi în unități absolute obținem 8.000 de celule în 1 μl de sânge. Pentru a recalcula numărul de celule într-un litru (sistemul SI de unități), rezultatul trebuie înmulțit cu 10 6, adică. 8.000*10 6 = 9*10 9 /l.

Înregistrarea lucrării. Scrieți sau schițați succesiunea numărării celulelor în camera lui Goryaev. Numărați numărul de celule și înregistrați.

Lucrarea 5. Pregătirea frotiurilor de sânge, Colorație Romanovsky-Giemsa

Echipament: lame de sticla degresate si pahare slefuite, vata, penseta, pipeta de 10 ml, pipete pentru ochi, tavi de dimensiuni lame, creion.

Reactivi: sânge de pește, alcool etilic 70%,

Tehnica se bazează pe capacitatea unui amestec de coloranți bazici (azur II) și acizi (eozină galbenă solubilă în apă) de a colora elementele celulelor sanguine în diferite culori și nuanțe. Formatiunile acidofile vor fi colorate in diverse nuante de rosu, bazofile - in culori de la violet la albastru.

Progresul lucrărilor. Degresați lamele

Luați diapozitivul cu mâna stângă între degetul mare și arătător de marginile scurte.

Aplicați o picătură de sânge (de mărimea unui bob de mei) la capătul drept al paharului (folosind o lamă de sticlă, colțul unui pahar de măcinat sau o pipetă). Picătura trebuie să fie de o asemenea dimensiune încât capătul frotiului pregătit din ea să nu ajungă la 1 cm de marginea paharului.

Sticla de măcinare este plasată la un unghi de 45° față de sticla principală, la marginea dreaptă a lamei, împinsă pe picătura de sânge, astfel încât picătura de sânge să fie distribuită uniform la marginea inferioară a paharului de măcinat. Distribuiți o picătură de sânge de la dreapta la stânga pe diapozitiv uniform și rapid. Frotiul trebuie să fie subțire, uniform, gălbui, translucid și ar trebui să arunce culorile curcubeului atunci când este privit la lumină.


A – pete neuniforme pe sticla slab degresată; B – frotiu scurt; B – cursă lungă și neuniformă; G – cursă groasă la început; D - cursa corectă.

Figura 2. Calitatea frotiului preparat.

Uscați rapid frotiul (sub o lampă, într-un termostat, deasupra unei lămpi cu alcool).

Marcați cu un creion simplu.

Se fixează într-o cuvă închisă în alcool etilic timp de 5 minute, se usucă la aer.

Se toarnă vopseaua Romanovsky preparată pe fundul vasului Petri, se pune preparatul cu o lovitură în jos în vopsea, se închide cu capacul vasului Petri (un vas Petri închis cu un filtru umezit în partea de jos). Se colorează frotiurile timp de 20 - 25 de minute într-o cameră umedă într-un termostat la 37 °C.

După colorare, clătiți frotiurile în apă curentă, uscați la aer și examinați sub imersie în ulei.

Înregistrarea lucrării. Notați succesiunea tehnicii de colorare.

– un dispozitiv optic pentru numărarea celulelor sau a altor particule comparabile cu acestea într-un volum dat de lichid. Este alcătuit dintr-o lamă de sticlă groasă cu o locașă dreptunghiulară (camera) cu o plasă microscopică aplicată și o sticlă de acoperire subțire. Camera a fost dezvoltată de profesorul Universității din Kazan Goryaev N.K. Datorită volumului de plasă crescut, are o precizie de numărare mai mare în comparație cu alte camere (Thomas, Zeiss, Türk, Bürker).

Caracteristicile tehnice ale camerei Goryaev

Dimensiunile pătratului mic al camerei lui Goryaev 0,05×0,05 mm
Dimensiunile pătratului mare al camerei lui Goryaev sunt 0,2×0,2 mm
Adâncimea camerei 0,1 mm
Volumul lichidului sub 1 pătrat mic 0,00025 mm3 (µl) = 1/4000 mm3 (µl)
Volumul lichidului sub 1 pătrat mare 0,004 mm3 (µl) = 1/250 mm3 (µl)
Volumul camerei Goryaev 0,9 mm3 (µl)

Descrierea rețelei camerei Goryaev

Grila camerei lui Goryaev este formată din 225 de pătrate mari, dintre care 25 sunt împărțite în 16 pătrate mici.

Figura 1. Grila camerei lui Goryaev


Figura 2. Pătratele mari (1) și mici (2) ale grilei camerei Goryaev


Figura 3. 225 de pătrate mari ale camerei lui Goryaev


Figura 4. 100 de pătrate de grilă mari ale camerei lui Goryaev


Fig. 5. Pătratul mare al camerei lui Goryaev împărțit în 16 pătrate mici.

Întreținerea camerei lui Goryaev

Între utilizare, camera trebuie depozitată într-un loc uscat. După lucru, camera se dezinfectează prin imersare timp de 30 de minute într-o soluție de alcool etilic 70%, sau timp de 60 de minute într-o soluție de formaldehidă 4%, după care camera se spală cu apă distilată și se șterge cu o cârpă moale.

Regula pentru numărarea celulelor într-un pătrat (regula lui Egorov)


Într-un pătrat, sunt numărate celulele aflate în interiorul acestuia, precum și cele care ating marginile din stânga și de sus. Celulele care ating marginile din dreapta și de jos nu sunt luate în considerare la numărare.

Metoda de numărare a leucocitelor în camera Goryaev

Se diluează proba de sânge de testat de 20 de ori cu o soluție de 3-5% de acid acetic și albastru de metilen (de exemplu, 20 μl de sânge și 380 μl de soluție de acid acetic). Ștergeți camera și acoperiți sticla uscată cu tifon. Nu folosiți tampoane de vată pentru ștergere din cauza fibrelor rămase pe sticlă. Frecați ușor capacul de sticlă pe cameră, aplicând o presiune ușoară până când apar inelele colorate ale lui Newton. Umpleți camera cu sânge diluat și țineți apăsat timp de 1 minut pentru a opri mișcarea celulelor. La mărire mică (ocular × 10, obiectiv × 8), numărați leucocitele în 100 de pătrate mari. Numărul de leucocite se calculează pe baza diluției sângelui (20) și a numărului de pătrate mari (100), după formula: X = (a×250×20) / 100, unde X este numărul de leucocite în 1 μl de sânge; a – numărul de leucocite numărate în 100 de pătrate mari din camera lui Goryaev. În practică, după abrevieri din formulă, numărul de leucocite numărate este înmulțit cu 50.

Metoda de numărare a celulelor roșii din sânge în camera Goryaev

Se diluează proba de sânge de testat de 200 de ori în soluție de NaCl 0,9% sau soluție Gayem (luați 20 μl de sânge și 4 ml de soluție). Ștergeți camera și acoperiți sticla uscată cu tifon. Nu folosiți tampoane de vată pentru ștergere din cauza fibrelor rămase pe sticlă. Frecați ușor capacul de sticlă pe cameră, aplicând o presiune ușoară până când apar inelele colorate ale lui Newton. Umpleți camera cu sânge diluat și țineți apăsat timp de 1 minut pentru a opri mișcarea celulelor. La o mărire mică (ocular × 10, obiectiv × 8), numărați globulele roșii în 5 pătrate mari împărțite în 16 mici (adică 80 de pătrate mici). Se recomandă numărarea celulelor în pătrate situate în diagonală. Numărul de globule roșii se calculează pe baza diluției sângelui (200) și a numărului de pătrate mici (80), după formula: X = (a×4000×200) / 80, unde X este numărul de roșii. celule sanguine în 1 μl de sânge; a – numărul de globule roșii numărate în 80 de pătrate mici din camera lui Goryaev. În practică, după abrevieri din formulă, numărul de globule roșii numărate se înmulțește cu 10.000.



Încărcare...Încărcare...