Echipament: microscop, camera lui Goryaev, pipetă, capilar din hemometrul lui Sali, eprubetă cu capac de cauciuc.
Reactivi: Lichid Turk (100 ml soluție de acid acetic 5% și 1 ml soluție de violet de gențiană sau albastru de metilen 1%) alcool, ulei de imersie.
Camera Goryaev este o lamă groasă de sticlă, cu patru caneluri în partea de mijloc, între care se află trei platforme înguste, al căror mijloc este cu 0,1 mm mai jos decât cele laterale și este împărțit în jumătate de o canelură transversală. Pe ambele părți ale acestei caneluri există grile aplicate pe sticlă. Grila lui Goryaev constă din 225 de pătrate mari, dintre care 25 sunt căptușite cu linii verticale și orizontale în 16 pătrate mici. Leucocitele sunt numărate într-o cameră de numărare Goryaev sub un microscop cu mărire redusă în 100 de pătrate mari nemarcate. Un pătrat mare este egal cu 16 pătrate mici, ceea ce corespunde cu 100 x 16 = 1600 pătrate mici. Unitatea de referință este un pătrat mic. Latura sa este de 1/20 mm, zona 1/20 * 1/20 = 1/400 mm 2. Volumul de sânge care se potrivește deasupra pătratului mic este de 1/400 mm 2 *1/10 mm = 1/4000 mm 3 (1/10 mm este înălțimea stratului de sânge). din 225 de pătrate mari
Progresul lucrărilor. Frecați capacul de sticlă pe camera Goryaev până când apar inele de curcubeu.
Setați mărirea microscopului la 280 de ori (ocular la 7, obiectiv la 40). Așezați camera pe scena microscopului, găsiți grilele și examinați-le.
Cu ajutorul unei pipete, se iau 0,4 ml de lichid Turk (soluție de acid acetic 5%, colorată cu albastru de metilen) și se toarnă într-o eprubetă.
Atrageți sânge în capilar de la hemometrul Sali până la semn (0,02 ml); ștergeți vârful capilarului cu vată; coborâți capilarul într-o eprubetă cu lichid Turk; suflați sânge într-o eprubetă; Clătiți capilarul eliminând această soluție de diluant de două ori. Închideți eprubeta cu un dop de cauciuc și amestecați conținutul. Atrageți conținutul eprubetei în capilar. Eliberați o picătură din capilar pe placa de mijloc sub o sticlă de acoperire de sol în camera Goryaev (bulele de aer nu ar trebui să intre sub geamul de acoperire). Lăsați timp de 1 minut pentru a permite celulelor sanguine să se stabilească.
Numărați numărul de globule albe din 100 de pătrate mari (sau 1600 de pătrate mici). Se iau în considerare celulele situate în interiorul fiecărui pătrat mic, pe laturile stângi și superioare ale fiecărui pătrat. Nu conta pe laturile inferioare si dreapta ale patratului, pentru ca numărul lor este luat în considerare la numărarea leucocitelor pătratului următor.
X=(A*4000*20)/1600, unde
A – numărul de leucocite în 100 de pătrate mari,
4000 este coeficientul de reducere a volumului la 1 mm 3 (1/4000 mm 3 este volumul unui pătrat mic),
20 – factor de diluție al sângelui cu un volum de 0,02 ml,
1600 este numărul de pătrate mici.
În practică, pentru a obține conținutul real de leucocite în 1 μl de sânge, este suficient să împărțiți numărul obținut în timpul numărării la jumătate și să atribuiți 2 zerouri (sau împărțiți numărul calculat de celule sanguine la 50), eroarea metodei. este ± 7%.
De exemplu, se numără 160 de leucocite, apoi în unități absolute obținem 8.000 de celule în 1 μl de sânge. Pentru a recalcula numărul de celule într-un litru (sistemul SI de unități), rezultatul trebuie înmulțit cu 10 6, adică. 8.000*10 6 = 9*10 9 /l.
Înregistrarea lucrării. Scrieți sau schițați succesiunea numărării celulelor în camera lui Goryaev. Numărați numărul de celule și înregistrați.
Lucrarea 5. Pregătirea frotiurilor de sânge, Colorație Romanovsky-Giemsa
Echipament: lame de sticla degresate si pahare slefuite, vata, penseta, pipeta de 10 ml, pipete pentru ochi, tavi de dimensiuni lame, creion.
Reactivi: sânge de pește, alcool etilic 70%,
Tehnica se bazează pe capacitatea unui amestec de coloranți bazici (azur II) și acizi (eozină galbenă solubilă în apă) de a colora elementele celulelor sanguine în diferite culori și nuanțe. Formatiunile acidofile vor fi colorate in diverse nuante de rosu, bazofile - in culori de la violet la albastru.
Progresul lucrărilor. Degresați lamele
Luați diapozitivul cu mâna stângă între degetul mare și arătător de marginile scurte.
Aplicați o picătură de sânge (de mărimea unui bob de mei) la capătul drept al paharului (folosind o lamă de sticlă, colțul unui pahar de măcinat sau o pipetă). Picătura trebuie să fie de o asemenea dimensiune încât capătul frotiului pregătit din ea să nu ajungă la 1 cm de marginea paharului.
Sticla de măcinare este plasată la un unghi de 45° față de sticla principală, la marginea dreaptă a lamei, împinsă pe picătura de sânge, astfel încât picătura de sânge să fie distribuită uniform la marginea inferioară a paharului de măcinat. Distribuiți o picătură de sânge de la dreapta la stânga pe diapozitiv uniform și rapid. Frotiul trebuie să fie subțire, uniform, gălbui, translucid și ar trebui să arunce culorile curcubeului atunci când este privit la lumină.
A – pete neuniforme pe sticla slab degresată; B – frotiu scurt; B – cursă lungă și neuniformă; G – cursă groasă la început; D - cursa corectă.
Figura 2. Calitatea frotiului preparat.
Uscați rapid frotiul (sub o lampă, într-un termostat, deasupra unei lămpi cu alcool).
Marcați cu un creion simplu.
Se fixează într-o cuvă închisă în alcool etilic timp de 5 minute, se usucă la aer.
Se toarnă vopseaua Romanovsky preparată pe fundul vasului Petri, se pune preparatul cu o lovitură în jos în vopsea, se închide cu capacul vasului Petri (un vas Petri închis cu un filtru umezit în partea de jos). Se colorează frotiurile timp de 20 - 25 de minute într-o cameră umedă într-un termostat la 37 °C.
După colorare, clătiți frotiurile în apă curentă, uscați la aer și examinați sub imersie în ulei.
Înregistrarea lucrării. Notați succesiunea tehnicii de colorare.
Echipamente: echipament individual de protectie, material de testare, tava, microscop, camera Goryaev, pipete Pasteur, suport cu eprubeta, dozatoare cu varfuri, servetele, recipiente cu solutii dezinfectante.
Reactiv: soluție de acid acetic 3%.
Algoritmul acțiunilor:
1. Spălați-vă și uscați mâinile și puneți-vă mănuși.
2. Măsurați 0,4 ml de acid acetic 3% într-o eprubetă uscată și curată.
3. Măsurați 0,02 ml de sânge integral și ștergeți suprafața vârfului cu un șervețel.
4. Se adaugă 0,02 ml de sânge integral într-o eprubetă cu acid acetic 3%.
5. Se amestecă conținutul eprubetei și se lasă să stea până la numărare (5 minute).
6. Pregătiți camera Goryaev pentru numărarea leucocitelor.
7. Amestecați din nou conținutul eprubetei înainte de a umple camera.
8. Aplicați o picătură de sânge diluat cu o pipetă Pasteur pe placa de mijloc a camerei de la marginea lamei.
9. Așezați camera pe scenă timp de 1-2 minute până când mișcarea lichidului în ea se oprește și globulele roșii se stabilesc. Porniți microscopul.
11. Calculați leucocitele folosind formula în 1 litru de sânge și notați-o pe formular.
X= (a x 20)/(100 x b)
unde X este numărul de leucocite din 1 μl de sânge; a - numărul de leucocite numărate; b - volumul unui pătrat mare 1/250 mm3;
20 - diluarea sângelui;
100 este numărul de pătrate mari în care s-a făcut numărarea.
Formula finală
X = a x 50 x 106 (în 1 L)
12. Evaluați rezultatele obținute din perspectiva „normă-patologie”.
13. Curățați locul de muncă.
Normă-patologie:
Celulele roșii din sânge sunt normale
Leucocite - normale
458 - globule roșii
137 - leucocite
137*50*106 = 6850*106 = 6,85x103/µl = 6,85x109/L
X=4,58x1012/L
Hematologie
4) Clasa de celule proliferative. Acestea sunt celule recunoscute morfologic. Deoarece diferă ca morfologie de cele 3 clase anterioare. Au un nucleu mare liber cu doi până la patru nucleoli, citoplasma este bazofilă
Spre deosebire de celulele anterioare, explozie
5) o clasă de celule în maturare, caracteristică seriei lor de hematopoieze
Pot exista mai multe tipuri de celule de la unu la 5 în seria eritrocitelor
6) clasa de celule mature
Funcționează în sângele periferic sau în afara patului vascular?
Numele fiecărei celule
Hematologie
Anemia (anemia) este un grup mare de afecțiuni și boli patologice, pentru care un simptom comun este o scădere a capacității sângelui de a transporta oxigen.
Anemia este un grup de boli, al căror punct comun este scăderea concentrației hemoglobinăîn sânge, mai rar cu o scădere simultană a numărului celule roșii din sânge(eritropenie).
Clasificarea anemiei:
6. Conform mecanismului de dezvoltare:
1. Anemia datorată pierderii de sânge.
2. Anemia datorată distrugerii sanguine crescute (hemolitică).
3. Anemie datorată tulburării formării sângelui.
7. După tipul de hematopoieză
1. Normoblastic
2. Megaloblastic
8. Conform indicatorului de culoare:
1. Normocrom, când indicele de culoare este 0,82-1,05
2. Hipocrom, dacă indicele de culoare este mai mic de 0,82
3. Hipercrom, când indicele de culoare este peste 1,05
9. După dimensiunea globulelor roșii:
1. Normocitar (cu un diametru mediu normal al eritrocitelor de 7,2 - 8,0 µm)
2. Microcitară (diametrul mediu al eritrocitelor sub 7,2 µm)
3. Macrocitar (diametrul eritrocitelor mai mare de 8 microni)
4. Megalocitar (diametrul eritrocitelor mai mare de 10 microni)
5. După activitatea regenerativă a măduvei osoase:
1. Regenerativ, cu funcție suficientă a măduvei osoase. Numărul de reticulocite din sângele periferic 1,0 -5,0%
2. Hiporegenerativ, cu funcția regenerativă redusă a măduvei osoase. Numărul de reticulocite în sângele periferic 0,2%
3. Hiperregenerativ, cu funcție de regenerare crescută a măduvei osoase. Numărul de reticulocite din sângele periferic depășește 5,0%
4. Aregenerative, cu o inhibare accentuată a eritropoiezei. Reticulocitele din sângele periferic, de regulă, nu sunt detectate
Microcitele - predominanța eritrocitelor cu un diametru de 5-6,5 microni în frotiurile de sânge - se observă în sferocitoza ereditară, anemie feriprivă, talasemie. Toate aceste celule au un volum redus și mai puțină Hb. Baza modificărilor în dimensiunea eritrocitelor este o încălcare a sintezei Hb.
Macrocitoza - predominanța globulelor roșii cu diametrul de peste 9 microni în frotiurile de sânge - este detectată în anemia macrocitară.
Megalocitoza - apare in frotiuri de sange ale globulelor rosii cu diametrul de 11-12 microni, hipercroma, fara limpezire in centru, de forma ovala.
Anizocitoza este prezența în frotiuri de sânge a eritrocitelor care variază ca mărime: cu predominanța eritrocitelor de diametru mic - microanizocitoza, cu predominanța eritrocitelor de diametru mare - macroanizocitoza.
Apare în stadiile incipiente ale anemiei și este un semn de diagnostic
Poikilocitoza este modificări în diferite grade de severitate în forma eritrocitelor, care devine diferită de discoid. Acesta este cel mai important semn al modificărilor patologice ale globulelor roșii
Schimbarea culorii
Hematologie – practică
Camere de numărare- dispozitive pentru numărarea elementelor formate din sânge, urină și lichid cefalorahidian, precum și microorganisme. Propus de K. s. franceză fiziologul L. Ch. Malassez în 1874
K. s. Sunt o lamă groasă de sticlă cu o adâncitură, pe baza căreia este gravată o grilă de numărare; O sticlă de acoperire din sticlă șlefuită este plasată peste locaș. Înălțimea constantă de K. s. este asigurată prin frecarea strânsă a sticlei de acoperire și a sticlei glisante până când se formează inele newtoniene curcubeu (benzi de interferență).
Elementele structurale ale tuturor tipurilor de grile sunt pătrate mari și mici. Grilele de diferite tipuri - Tom, Burker, Predtechensky, Turk, Neubauer, Goryaev, Fuchs - Rosenthal etc. - se disting prin diferite grupări de pătrate mari și mici.
Cantitățile cunoscute - înălțimea camerei, aria grilei și diviziunile sale și diluția sângelui prelevat pentru testare - fac posibilă calcularea numărului de elemente formate într-un anumit volum (1 μl) de sânge (sau alt mediu).
Există K. s. deschise și închise. Într-o cameră închisă, capacul de sticlă este măcinat după umplere, ceea ce poate introduce bule de aer. Astfel de K. s. (Thomas - Zeiss cu o grilă Tom, Dunger cu o grilă specială) sunt incomod de a lucra cu și nu sunt folosite.
Camerele deschise (Fig. 1) sunt umplute după frecarea sticlei de acoperire. Au două grile pe un singur slide. Plăcile cu grile gravate sunt delimitate prin caneluri una de cealaltă, precum și de restul glisei. Prezența canelurilor face posibilă reglarea umplerii camerelor. Unele camere sunt echipate cu cleme metalice care fixează lamelă.
Deschide K. s. descris pentru prima dată de S.P.Alferov în 1883, apoi în 1905 de K. Burker. Sunt cunoscute camerele de numărare deschise ale lui Klyucharev, Gausser și Levy, Gelber, Glaubermann. În URSS, camerele de numărare Goryaev și Fuchs-Rosenthal sunt utilizate pe scară largă. Camera Goryaev cu plasă Goryaev (Fig. 2) are un volum de 0,9 µl, aria ochiurilor este de 9 mm 2. Grila este formată din 225 de pătrate mari; dintre acestea, 100 sunt goale, 25 sunt împărțite fiecare în 16 pătrate mici, 100 sunt împărțite prin dungi.
Camera de numărare Fuchs-Rosenthal cu o grilă Fuchs-Rosenthal (Fig. 3) are un volum de 3,2 µl, o zonă a grilei de 16 mm 2, este formată din 256 de pătrate mari (pătratele separate prin dungi nu sunt numărate).
Metoda de lucru
Înainte de lucru, glisați K. s. iar sticla de acoperire a solului se spală sub jet de apă de la robinet și se șterge. Apoi capacul de sticlă este frecat strâns pe cameră (până când apar inelele curcubeului lui Newton, deoarece numai în această condiție volumul capsulei este constant).
Conținutul eprubetei este amestecat de mai multe ori înainte de a umple camera, apoi se ia o picătură de sânge din eprubetă cu capătul topit al unei baghete de sticlă, se înclină și se aplică pe o lamă de sticlă chiar la marginea capacului. sticlă. Dacă o picătură de sânge nu este suficientă pentru a umple complet vasul de sânge, adăugați o altă picătură. Dacă sângele este luat în mixer, atunci primele picături din capilarul mixerului sunt eliberate și K. s. umpleți cu o picătură din fiola mixerului. Lichidul rămas din lamă este îndepărtat cu un tampon de tifon. Numărătoarea începe după 3 minute. după umplerea camerei (în acest timp celulele sanguine se depun) la microscop la mărire mică (lentila X 8, ocular X 10 sau X 15) și un câmp vizual întunecat (cu diafragma închisă sau cu condensatorul ușor coborât). Celulele aflate în interiorul pătratului sunt numărate (Fig. 4). Celulele străbătute de laturile pătratelor sunt numărate după cum urmează: dacă mai mult de jumătate din celulă se află în interiorul pătratului, atunci este numărată dacă este în afară, nu este numărată. Celulele străbătute de linii exact la mijloc se numără pe două linii adiacente, dreapta și sus, de pătrate și nu se numără pe celelalte două. Când se utilizează soluții de diluare adecvate, celulele roșii din sânge, leucocitele, trombocitele, eozinofilele, bazofilele și reticulocitele pot fi numărate în camera Goryaev.
Globulele roșii sunt numărate în 80 de pătrate mici, adică în 5 pătrate mari situate în diagonală. Calculul se efectuează după formula:
X = a*4000*200/80,
unde a este numărul de globule roșii numărate în 80 de pătrate mici, 80 este numărul de pătrate mici numărate, 200 este gradul de diluare a sângelui, 4000 este multiplicatorul pentru obținerea conținutului de globule roșii în 1 μl de sânge ( volumul unui pătrat mic este de 1/4000 μl). În practică, numărul de globule roșii numărate în 5 pătrate mari este înmulțit cu 10.000.
Leucocitele sunt numărate în 1600 de pătrate mici (în 100 de pătrate mari). Calculul se efectuează după formula:
X = a * 4000 * 20 /1600,
unde a este numărul de leucocite numărate în 1600 pătrate mici, 1600 este numărul de pătrate mici numărate, 20 este gradul de diluție a sângelui, 4000 este multiplicatorul pentru obținerea conținutului de leucocite în 1 μl de sânge. Practic, numărul de leucocite numărate în 1600 de pătrate mici se înmulțește cu 50.
Trombocitele sunt numărate în 400 de pătrate mici (25 de pătrate mari de-a lungul diagonalei grilei). Reactivii pentru diluare pot fi soluție izotonică de clorură de sodiu, diverse soluții care conservă trombocitele și hemolizează eritrocitele.
Trombocitele sunt numărate la un microscop convențional și folosind un dispozitiv de contrast de fază (vezi Microscopia de contrast de fază) pentru a le identifica mai clar. După diluare, eprubeta cu sânge se lasă timp de 25-30 de minute. pentru hemoliza globulelor roșii. Apoi conținutul eprubetei se amestecă din nou și se umple cu K., care se pune timp de 5 minute. într-o cameră umedă (de exemplu, vase Petri cu vată umedă) pentru a permite trombocilor să se așeze. Calculul se efectuează după formula:
X = a*4000*200/400,
unde a este numărul de trombocite numărate în 400 de pătrate mici, 200 este gradul de diluare a sângelui, 400 este numărul de trombocite numărate, 4000 este multiplicatorul pentru obținerea conținutului de trombocite în 1 μl de sânge. În practică, numărul de trombocite numărate în 400 de pătrate mici se înmulțește cu 2000.
Numărul de bazofile și eozinofile este numărat în camera Goryaev în 1600 de pătrate mici, la fel ca și leucocitele. Aproape numărul calculat de bazofile și eozinofile este înmulțit cu 50.
Reticulocitele sunt numărate în camera Goryaev în 80 de pătrate mici, ca celulele roșii din sânge. În practică, numărul calculat de reticulocite este înmulțit cu 10.000.
Determinarea numărului total de celule din lichidul cefalorahidian (vezi) se face cel mai bine într-o cameră Fuchs-Rosenthal (datorită numărului mic de leucocite din lichidul cefalorahidian). Numărați pe întreaga grilă (256 pătrate mari) la microscop cu mărire redusă (ocular X 15, obiectiv x 8).
Dacă numărul de celule este foarte mare, se poate număra jumătate din grilă (urmată de înmulțirea rezultatului cu 2). Calculul se efectuează după formula:
X = a*11/3,2*10,
unde a este numărul de celule numărate în 256 pătrate, 11/10 este gradul de diluție, 3,2 este volumul camerei în μl. În practică, atunci când se numără într-o cameră Fuchs-Rosenthal, numărul de leucocite este împărțit la 3.
În camera Goryaev, celulele lichidului cefalorahidian sunt numărate de cel puțin 3 ori (de asemenea, întreaga zonă), de fiecare dată umplând din nou camera, apoi se ia media aritmetică. Calculul se efectuează după formula:
X = a*11/0,9*10,
unde a este numărul mediu aritmetic de celule numărate pe întreaga grilă, 11/10 este gradul de diluție, 0,9 este volumul camerei în μl. În practică, numărul de leucocite numărate este înmulțit cu 1,2.
Determinarea cantitativă a elementelor formate în urină se efectuează în camerele Fuchs-Rozental, Goryaev: numărarea eritrocitelor și leucocitelor la mărire medie la microscop, numărarea cilindrilor la mărire mică. Gradul de diluare a urinei depinde de metoda de testare (vezi Urina).
Numărând în K. s. nu complet exacte. Eroarea metodei variază de la 10 la 20%, în funcție de numărul de elemente numărate.
Condiții de îngrijire și păstrare
Camerele trebuie protejate de contaminare și praf de pătrundere pe plasă. După muncă, camera și capacul de sticlă sunt spălate sub jet de apă de la robinet și șterse cu grijă, dar bine, cu un șervețel curat (sau tifon). Apoi îl înfășoară în hârtie și îl pun într-o cutie.
Bibliografie: Manual de metode de cercetare de laborator clinic, ed. E. A. Kost, p. 22, M., 1975.
D. N. Ișmukhametov
Necesar pentru muncă s: scarificatoare, bile de vată, alcool, eter, camera de numărare a lui Goryaev, mixer (melanger) pentru numărarea leucocitelor, soluție de acid acetic 5%, colorată cu albastru de metilen, microscop. Obiect de studiu– Uman.
Efectuarea lucrărilor: Camera de numărare este plasată la microscop și grila Goryaev este examinată mai întâi la mărire mică și apoi la mărire mare. Acoperiți camera cu un pahar de acoperire, frecându-și marginile de sticla camerei până când apar inelele curcubeului lui Newton. Lăsând camera sub microscop, degetul este străpuns folosind metoda descrisă anterior. Prima picătură de sânge care apare de pe deget este șters cu un tampon de vată. Vârful mixerului de leucocite este scufundat în a doua picătură, ținut vertical și sângele extras până la marcajul 1, asigurându-vă că nu pătrund bule de aer în capilar. Ștergeți capătul capilarului cu hârtie de filtru și repede, înainte ca sângele să se coaguleze, transferați-l într-o cană cu o soluție de acid acetic 5%, continuând să țineți mixerul pe verticală. Soluția este extrasă la marcajul 11 (adică sângele este diluat de 10 ori), după care mixerul este transferat într-o poziție orizontală și plasat pe masă.
Pentru a număra leucocitele, luați melangeurul umplut, strângând capătul inferior cu un deget, îndepărtați bulbul de cauciuc și, ținând ambele capete ale mixerului cu al treilea și primul degete, amestecați sângele timp de 1 minut. În acest caz, celulele roșii din sânge sunt distruse și doar leucocitele, sau mai bine zis nucleele lor, rămân în câmpul vizual. Deoarece acidul acetic este colorat cu albastru de metidenă, nucleii leucocitelor devin mai vizibili. Trei picături sunt eliberate din mixer pe vată, iar a patra este aplicată pe platforma din mijloc a camerei de la marginea geamului de acoperire. Prin forțe capilare, picătura în sine este atrasă în capacul de sticlă și umple camera. Excesul de soluție de sânge curge în șanț. Dacă aerul intră în plasă sau există exces de soluție pe platformele laterale, camera trebuie clătită cu apă distilată, uscată și umplută din nou. Camera umplută este plasată la microscop și, dacă elementele formate sunt situate uniform (ceea ce este un indicator al amestecării bune a sângelui), acestea încep să conteze. Numărați numărul de leucocite în 25 de pătrate mari (împărțite în 400 de mici). Numărarea se efectuează într-un pătrat mic în rânduri (de sus în jos). Pentru a evita dubla numărare a celulelor situate la granița dintre pătratele mici, se aplică regula lui Egorov: „un pătrat dat include celulele roșii din sânge aflate atât în interiorul pătratului, cât și pe marginile sale din stânga și de sus; celulele roșii din sânge situate pe marginile drepte și inferioare nu aparțin acestui pătrat.” Numărând suma leucocitelor din 25 de pătrate mari (adică 400 de pătrate mici), se găsește numărul mediu aritmetic de leucocite dintr-un pătrat mic. Știind că volumul spațiului camerei de deasupra unui pătrat mic este egal cu 1/4000 mm 3 , înmulțiți numărul găsit cu 4000. Se obține numărul de leucocite în 1 mm 3 de sânge diluat. Înmulțind cu valoarea de diluție (10), se obține numărul de leucocite din 1 mm 3 de sânge integral. Astfel, formula de calcul a numărului de leucocite este următoarea: X = (L x 4000 x 10)/400, unde x este numărul dorit de leucocite în 1 mm 3 de sânge integral, L este suma leucocitelor din 400 pătrate mici, 400 este numărul de pătrate mici în care s-a făcut o numărare, 10 - diluție de sânge. Apoi se înregistrează numărul rezultat de leucocite în termeni de 1 litru de sânge, adică. numărul de mii de leucocite găsite în 1 mm 3 se înmulțește cu 10 9.
Înregistrarea rezultatelor și evaluarea acestora: Notați câte leucocite sunt conținute în 1 litru de sânge testat. Comparați rezultatele obținute cu norma. La adulți, această cifră este de 6-8 mii pe 1 mm 3 sau (6,0 - 9,0) x10 9.
Sfârșitul lucrării -
Acest subiect aparține secțiunii:
Materiale educaționale și metodologice pentru modulul II
Universitatea Națională de Medicină din Odesa.. Departamentul de Fiziologie.. materiale educaționale și metodologice..
Dacă aveți nevoie de material suplimentar pe această temă, sau nu ați găsit ceea ce căutați, vă recomandăm să utilizați căutarea în baza noastră de date de lucrări:
Ce vom face cu materialul primit:
Dacă acest material ți-a fost util, îl poți salva pe pagina ta de pe rețelele sociale:
| Tweet |
Toate subiectele din această secțiune:
Sistemul sanguin
Obiective specifice: 1. Cunoașterea compoziției și funcțiilor sistemului sanguin, a mecanismelor de reglare a acestuia pe baza analizei parametrilor homeostaziei (volumul sanguin, echilibrul acido-bazic, osmo).
Caracteristicile generale ale sistemului sanguin. Studiul funcțiilor și proprietăților fizice și chimice ale sângelui
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea compoziției sângelui și a mecanismului de menținere a constantelor sale de bază este necesară pentru a înțelege rolul sângelui ca mediu intern al organismului.
Metodă de obținere a sângelui pentru analiză la om
Pentru lucru ai nevoie de: scarificatoare, bile de bumbac, alcool, eter. Obiectul cercetării este o persoană.
Efectuarea muncii: A nu primi
Metodologie pentru determinarea raportului volumetric dintre elementele formate și plasmă (hematocrit)
Pentru lucru ai nevoie de: scarificatoare, bile de bumbac, alcool, eter, solutie de citrat de sodiu 4%, centrifuga, capilare din sticla gradata. Obiectul de studiu -
Metodă pentru determinarea prezenței și cantității de proteine în plasma sanguină
Pentru munca ai nevoie de: plasma sanguina, solutie de citrat de sodiu 4%, refractometru, apa distilata, masa Reis. Obiectul cercetării este o persoană.
Metodă de studiere a proprietăților tampon ale serului sanguin conform Friedenthal
Pentru muncă aveți nevoie de: probe de ser de sânge diluate de 10 ori; apă distilată; soluție de HCI 0,1 N; soluție de KOH 0,01 N; indicatori - fenolftaleină, metil portocală; s 4 dimensional
Metodă de pregătire a unui frotiu de sânge și de studiere la microscop
Pentru lucru ai nevoie de: scarificatoare, bile de bumbac, alcool, eter, lame de sticla. Obiectul cercetării este o persoană.
Fiziologia globulelor roșii și a hemoglobinei
Caracteristicile motivaționale ale subiectului Cunoașterea funcțiilor globulelor roșii, hemoglobinei și rezistența lor osmotică este necesară pentru a înțelege rolul sângelui ca mediu intern al organismului.
Metoda de numărare a celulelor roșii din sânge în camera de numărare a lui Goryaev
Metodă de calcul al indicelui de culoare al sângelui
Metodă pentru determinarea vitezei de sedimentare a eritrocitelor (ESR)
Pentru lucru aveți nevoie de: scarificatoare, bile de bumbac, alcool, soluție de citrat de sodiu 5%, capilar Panchenkov, suport Panchenkov, sticlă de ceas sau eprubetă Vidal. Obiect studiat
Metodă de determinare a stabilității osmotice a eritrocitelor
Pentru lucru aveți nevoie de: un suport cu 18 eprubete, soluții de clorură de sodiu în concentrații descrescătoare de 0,9%, 0,85%, 0,8% etc. până la 0,1% soluție), eprubetă cu apă distilată, eprubetă
Metodologie pentru determinarea conținutului mediu de hemoglobină într-un globul roșu (SHE)
Pentru muncă aveți nevoie de: indicatori obținuți anterior pentru nivelul hemoglobinei și numărul de globule roșii dintr-o probă de analiză de sânge. Obiectul cercetării este o persoană.
Studiul proprietăților protectoare ale sângelui. funcțiile leucocitelor. Conceptul de imunitate, tipurile sale
Caracteristicile motivaționale ale subiectului Este necesară cunoașterea proprietăților protectoare ale sângelui și a funcțiilor leucocitelor pentru a înțelege mecanismele reacțiilor imunologice în condițiile de mediu în schimbare.
Metodă de calcul a formulei leucocitelor într-un frotiu de sânge
Pentru muncă aveți nevoie de: un frotiu de sânge pregătit în prealabil, colorat conform Romanovsky-Giemsa, un microscop, ulei de imersie. Obiectul cercetării este o persoană.
Tipuri și mecanisme de hemostază. Fiziologia trombocitelor
Caracteristicile motivaționale ale subiectului Cunoașterea proprietăților hemostatice ale funcțiilor sângelui și trombocitelor este necesară pentru a înțelege mecanismele de formare a trombului și menținerea sângelui în stare lichidă.
Tehnica de înregistrare grafică a procesului de coagulare a sângelui (tromboelastografia)
Pentru lucru ai nevoie de: tromboelastograf, scarificatoare, bile de bumbac, alcool, un capilar special. Obiectul cercetării este o persoană.
Metodologie de înregistrare a procesului de coagulare și recalcificare a plasmei cu ajutorul coagulografiei
Pentru lucru aveți nevoie de: coagulograf, scarificatoare, bile de bumbac, alcool, capilar special, soluție CaCL 1,29%, plasmă de citrat Obiectul de studiu este o persoană.
Determinarea timpului de coagulare a sângelui folosind metoda fonio
Determinarea timpului de coagulare a sângelui folosind metoda Lee și White
Pentru muncă ai nevoie de: scarificatoare, bile de bumbac, alcool, eprubetă, cronometru. Obiectul cercetării este o persoană.
Realizarea lucrarii:
Pentru muncă ai nevoie de: scarificatoare, bile de bumbac, alcool, eprubetă, cronometru. Obiectul cercetării este o persoană.
Determinarea timpului de sângerare folosind metoda Duke
1. Un băiețel sănătos de 5 ani, care mânuia neglijent un cuțit, și-a tăiat degetul și sângera. Aproximativ cât va dura sângerarea?
Caracteristicile motivaționale ale subiectului Cunoașterea doctrinei grupelor de sânge este necesară pentru a înțelege principiile transfuziei de sânge și metodele de efectuare a testelor de compatibilitate înainte de transfuzie.
Metodă de determinare a grupelor sanguine conform sistemului ABO folosind seruri standard
Serurile standard sunt plasmă purificată din fabrică de la donatori de diferite grupe de sânge, care nu conțin fibrinogen, cu o concentrație mare de anticorpi la unul sau mai mulți anticorpi.
Posibile erori în determinarea grupelor de sânge
Absența aglutinarii poate fi observată ca urmare a: - unui raport eronat dintre sângele testat și serul standard - un titru slab al serurilor standard
Metodă de determinare a grupelor sanguine conform sistemului AVO folosind zoliclone
Zoliclonele anti-A și anti-B sunt imunoglobuline specifice, adică. anticorpi (aglutinine) la antigenele de grup A și B, care sunt formate de limfocitele B monoclonale ca răspuns la
Activități efectuate înainte de transfuzia de sânge
1. Determinarea compatibilității de grup a sângelui primitorului și al donatorului 2. Determinarea compatibilității individuale a sângelui primitorului și al donatorului 3. Determinarea compatibilității sângelui primitorului
Abilități practice în fiziologia sistemului sanguin
Caracteristicile motivaționale ale subiectului. Consolidarea abilităților practice în metode de studiere a stărilor funcționale ale sistemului sanguin, utilizate în scopul diagnosticării și tratamentului în clinică
Studiul variabilității ritmului cardiac în repaus la persoanele sănătoase cu construirea unei curbe de distribuție normală pentru această caracteristică
Se știe că ritmul cardiac este determinat de activitatea automată a diferitelor părți ale sistemului de conducere miocardic. În condiții normale, stimulatorul cardiac principal este sinoatrial
funcția de pompare a inimii. ciclu cardiac, metode de studiu al acestuia
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea structurii ciclului cardiac și a mecanismelor fazelor sale este necesară pentru a înțelege procesele de funcționare a miocardului, care asigură alimentarea cu sânge.
Determinarea duratei ciclului cardiac la o persoană prin puls în repaus și în timpul activității fizice
Ritmul cardiac al unei persoane aflate în stare de repaus fizic și emoțional fluctuează între 60-80 bătăi/min. În timpul activității fizice, ritmul cardiac
Evaluarea și analiza rezultatelor electrocardiografiei
O electrocardiogramă este o înregistrare grafică a diferenței de potențial a cardiomiocitelor, care reflectă procesul de propagare a excitației prin sistemul de conducere către miocard. Componentele principale ale ECG - interval
Studiul reglării nervoase a activității inimii
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de reglare a activității cardiace este necesară pentru a înțelege procesele funcționării miocardice sub influența diferitelor sisteme nervoase.
Influența reflexului Danini-Aschner asupra ritmului cardiac la om
La oameni, atunci când se aplică presiune asupra globilor oculari, ritmul cardiac poate scădea. Acest efect se explică prin excitarea reflexă a nucleilor nervului vag.
Necesar pentru muncă
Studiul reglării umorale a activității inimii
Caracteristicile motivaționale ale subiectului Cunoașterea mecanismelor de reglare a activității cardiace este necesară pentru a înțelege funcționarea miocardului sub influența diferitelor substanțe umorale.
circulatie sistemica. Legile hemodinamicii, rolul vaselor de sânge în circulația sângelui. Test de tensiune arterială
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea principiilor de bază ale hemodinamicii este necesară pentru a oferi posibile modalități de menținere a homeostaziei în diferite stări funcționale.
Măsurarea tensiunii arteriale la om folosind metoda de palpare Riva Rocci
Pentru funcționare este necesar un tensiometru. Obiectul cercetării este o persoană.
Efectuarea lucrărilor. Aplicați manșeta pe umăr așa cum este indicat
Măsurarea tensiunii arteriale (TA) la oameni folosind metoda Korotkov
Valoarea tensiunii arteriale este unul dintre indicatorii prin care se poate judeca activitatea inimii și starea vaselor de sânge ale corpului. Metoda auscultatorie Korotkoff de măsurare a tensiunii arteriale se bazează pe auz
Studiul reglării circulației sanguine. Reglarea tonusului vascular
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de reglare a tensiunii arteriale este necesară pentru a înțelege procesele de menținere a homeostaziei sub influența diferitelor sisteme nervoase.
Studiul modificărilor tensiunii arteriale și ale ritmului cardiac la oameni în timpul activității fizice
Activitatea fizică afectează activitatea sistemului cardiovascular, de obicei crescând presiunea sistolice și ritmul cardiac (FC). Modificările acestor indicatori depind de modul în care
Studiul modificărilor tensiunii arteriale și ale ritmului cardiac la oameni atunci când sunt expuși la frig
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor microcirculației și a caracteristicilor fluxului sanguin regional este necesară pentru a înțelege procesele de menținere a homeostaziei în condiții de operare.
Observarea fluxului sanguin venos
Funcția principală a sistemului venos este de a returna sângele la inimă, astfel încât sângele curge prin vene în direcția de la periferie spre centru, spre inimă. Acest lucru este facilitat de factori precum
Studiul circulației limfatice
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de funcționare a sistemului limfatic este necesară pentru înțelegerea proceselor metabolice din țesuturi și a conexiunii dinamice dintre celule.
Studiul efectelor stimulatoare ale iritației gastrice la o broaște spinală asupra funcționării inimii sale limfatice
SARCINI DE TEST PENTRU AUTOCONTROLUL NIVELULUI DE CUNOAȘTERE: 1. Unde ar trebui plasat cateterul într-un animal pentru a colecta limfa din ductul limfatic toracic?
O.
abilități practice în fiziologia sistemului circulator
Caracteristicile motivaționale ale temei Consolidarea abilităților practice în metode de studiere a stărilor funcționale ale sistemului circulator, utilizate în scopul diagnosticării și tratamentului.
Caracteristicile generale ale sistemului respirator. Analiza spirogramei
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor respirației externe și analiza indicatorilor acesteia sunt necesare pentru înțelegerea și evaluarea procesului respirator în diferite stări funcționale.
1. Studiul capacității vitale a plămânilor cu ajutorul spirometriei.
2. Studiul parametrilor respiratori externi folosind spirografie.
Studiu de viață
Examinarea respirației externe. Studiul mecanismului de inspirație și expirație
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de inhalare și expirare este necesară pentru a evalua starea organelor respiratorii în practica medicală.
Obiectivele lecției: cunoștințe
Studiul vitezei maxime de inspirație și expirare în timpul respirației forțate (pneumotahometrie)
Măsurarea vitezei maxime de inspirație și expirare în timpul respirației forțate (pneumotahometrie) este cea mai simplă metodă de diagnosticare a obstrucției bronșice și depinde atât de puterea respiratorie.
Transportul de gaze prin sânge, semnificație pentru organism
2. Rolul hemoglobinei și mioglobinei în respirație.
3. Curba de disociere a oxihemoglobinei. Factori care influențează formarea și disocierea oxihemoglobinei.
4. Capacitatea de oxigen a sângelui, UI
D. Apariția distrugerii țesuturilor
E. Conduce la dezvoltarea hipoxiei tisulare 2. Indicatorul care reflectă poziția curbei de disociere a oxihemoglobinei este... A. PO2 la 100% la
E. Toate răspunsurile sunt incorecte
Răspunsuri: 1-B. 2-C. 3-D. 4-C. 5-C. 6-C. 7-C. 8-A. 9-D. 10-C.
Sarcini situaționale: 1. La un pacient
studiul reglării nervoase a respirației
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de reglare a respirației este necesară pentru a înțelege procesele de funcționare a sistemului respirator sub influența diferitelor neurogeni.
studii de reglare umorală a respirației
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de reglare respiratorie este necesară pentru a înțelege procesele de funcționare a sistemului respirator sub influența diferitelor umorale.
E. adâncimea şi frecvenţa respiraţiei vor scădea
Răspunsuri: 1-D. 2-B. 3-A. 4-C. 5-D. 6-D. 7-C. 8-A. 9-D. 10-C.
SARCINI DE TESTARE PENTRU AUTOCONTROLUL NIVELULUI DE CUNOAȘTERE conform programului Krok 1. Ce
abilități practice în fiziologia aparatului respirator
Caracteristicile motivaționale ale temei.. Este necesară consolidarea abilităților practice în metodele de cercetare a aparatului respirator folosit în scopul diagnosticării și tratamentului în clinică.
Metabolismul energetic
Obiective specifice: 1. Trageți concluzii despre intensitatea metabolismului pe baza unei analize a costurilor energetice care caracterizează metabolismul bazal.
2. Trageți concluzii despre cele predominante
metabolismul energetic și bazal și metodele de cercetare ale acestuia
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea proceselor metabolice și a metodelor de determinare a acesteia este necesară pentru a înțelege unitatea și echilibrul proceselor anabolice și catabolice.
Studiul stării metabolismului uman prin analiza indicelui de masă corporală
Studiul prezenței receptorilor pielii de căldură și frig
Termoreceptorii sunt localizați mai adânc în piele decât cei tactili. Stimulii rece sunt percepuți de baloanele lui Krause, iar stimulii de căldură de corpusculii lui Ruffini. Densitatea dispunerii lor: 10-13 la rece și 1-2 termice
Sistemul digestiv
Obiective specifice: 1. Interpretarea conceptelor de aparat digestiv si a mecanismelor de reglare a functiilor fiziologice ale acestuia - secretorie, motorii, de absorbtie.
2. Faceți o concluzie
Studiul pragurilor gustative
Există patru senzații gustative „primare”: dulce, acru, sărat, amar. Pragul de sensibilitate la gust este concentrația minimă a substanței de testat care provoacă
Studiul câmpurilor gustative ale limbii
Pentru muncă aveți nevoie de: soluție de zahăr 10%, soluție de NaCl 10%, soluție de acid citric 1%, soluție de clorhidrat de chinină 0,5%, picătură pentru ochi, pahar cu apă. Obiect de studiu
Studiul efectului precursor al salivei asupra amidonului
Pentru muncă aveți nevoie de: 6 ml de salivă umană, soluție 1% de amidon crud și fiert, reactivi Fehling II, baie de apă, 6 eprubete, lampă cu alcool, pahar cu apă. Obiect de studiu
Digestia în stomac. Metode pentru studiul digestiei în stomac
Caracteristicile motivaționale ale subiectului Cunoașterea mecanismelor de digestie în cavitatea stomacului este necesară pentru a înțelege mecanismele de funcționare a sistemului nutrițional în diferite condiții funcționale.
Evaluarea funcției secretoare gastrice pe baza rezultatelor analizei sucului gastric
Pentru muncă aveți nevoie de: rezultatele unui studiu al sucului gastric uman. Obiectul cercetării este o persoană.
Efectuarea lucrărilor: Utilizarea
Sarcini de testare pentru auto-monitorizarea nivelului de cunoștințe
1. Pacientul a suferit rezecție gastrică cu îndepărtarea regiunii pilorice. Ce procese din tractul gastrointestinal au fost perturbate?
A. Tranziția chimului în duoden B. Peristaltismul
Digestia în duoden (DU). Rolul sucului pancreatic și al bilei în procesul digestiv
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de digestie în duoden este necesară pentru a înțelege mecanismele de funcționare a sistemului nutrițional sub diferite funcții.
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de digestie în intestine este necesară pentru a înțelege mecanismele de funcționare a sistemului nutrițional în diferite condiții funcționale.
Program de lucru practic la clasă
1. Construirea unui circuit de reglare a proceselor de foame și sațietate.
SARCINI DE TEST PENTRU AUTOCONTROLUL NIVELULUI DE CUNOAȘTERE: 1. Pacientul are sinteza de enterokinaze afectată. Cum
activitatea motorie a stomacului și a intestinelor. Procese de absorbție
Program de lucru practic la clasă
Caracteristicile motivaționale ale subiectului Cunoașterea mecanismelor de absorbție și a activității motorii a tractului gastrointestinal este necesară pentru a înțelege mecanismele de funcționare a sistemului.
1. Construirea unui circuit de reglare a constanței compoziției nutrienților în mediul intern al organismului.
SARCINI DE TEST PENTRU AUTOCONTROLUL NIVELULUI DE CUNOAȘTERE: 1.
Abilități practice în fiziologia sistemului digestiv
Caracteristicile motivaționale ale subiectului. Consolidarea abilităților practice în metode de studiere a stărilor funcționale ale organelor sistemului digestiv, utilizate în scopul diagnosticării și l
Sistem de extractie
Obiective specifice: 1. Explicați conceptele sistemului excretor și mecanismele de reglare a homeostaziei cu participarea acesteia pe baza analizei constantelor - volumul sanguin circulant, concentrația
Program de lucru practic la clasă
caracteristicile generale și funcțiile sistemului de excreție. Rolul rinichilor în procesele de excreție, mecanismul de formare a urinei
Caracteristicile motivaționale ale subiectului Cunoașterea mecanismelor de formare a urinei este necesară pentru a înțelege funcționarea sistemului excretor în diferite condiții funcționale.
1. Calculați rata de filtrare glomerulară folosind datele din fișă. Trageți o concluzie.
Program de lucru practic la clasă
2. Determinați cantitatea de reabsorbție de apă în nefron folosind datele din fișă
reglarea funcției renale
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea mecanismelor de reglare a funcțiilor rinichilor este necesară pentru a înțelege procesele de funcționare a sistemului pentru distingerea diferitelor stări funcționale.
Program de lucru practic la clasă
1. Realizarea unui circuit de reglare a procesului de urinare.
La reglarea procesului de urinare, feedback-ul negativ și pozitiv interacționează, ceea ce asigură eficient
10. În ce parte a nefronului este reabsorbită în principal glucoza?
A. proximal B. distal C. canal colector D. ansa de Henle
aptitudini practice în fiziologia sistemului excretor
Caracteristicile motivaționale ale temei Cunoașterea abilităților practice în studierea stării funcționale a organelor sistemului urinar este necesară pentru a înțelege mecanismele de funcționare.
E. 60-100 ml
Răspunsuri: 1-D., 2-B., 3-B., 4-D., 5-C., 6-E., 7-C., 8-D., 9-C., 10-D. .
Sarcini situaționale: 1. În caz de boală
Fiziologia sângelui
1. Caracteristicile generale ale sistemului sanguin, compoziția și funcțiile sângelui.
2. Conceptul de hemostază, mecanisme de hemostază și mecanisme de reglare a acesteia.
3. Electroliții din plasmă sanguină, cantitatea acestora. DESPRE
Potențialul de acțiune al cardiomiocitelor ventriculare tipice, mecanismul apariției acestuia, reprezentarea grafică, rolul fiziologic
8. Relații de timp între AP și contracția miocardică unică.
9. Perioadele refractare în timpul dezvoltării AP ale cardiomiocitelor tipice, semnificația lor.
10. Împerecherea de excitație și co
Metabolism și termoreglare
17. Surse și modalități de utilizare a energiei în corpul uman.
18. Metode de determinare a consumului uman de energie. Coeficientul respirator.
19. Metabolismul de bază și condițiile pentru determinarea acestuia
Digestie
27. Definiți și descrieți structura sistemului digestiv.
28. Enumerați principalele funcții ale digestiei.
29. Enumerați etapele procesării alimentelor în cavitatea bucală.
30. N Selecţie
68. Sistemul de excreție, funcțiile sale. Caracteristicile fluxului sanguin renal.
69. Organe excretoare – rinichi, plămâni, piele, tract gastrointestinal.
70. Structura și funcțiile structural-funcționale
Desenați diagrame ale circuitelor de reglare a circulației sistemice în diferite condiții fiziologice ale organismului
21. Interpretați rolul caracteristicilor circulației sanguine regionale și reglarea acesteia (pulmonară, coronariană, cerebrală, abdominală) pentru a asigura reacții adaptative 22. Evaluați condițiile
Factori care influențează acuratețea studiului leucocitelor
Crioglobulinemie.
- Paraproteinemie
- Normoblastele
Agregatele trombocite
Numărarea leucocitelor la microscop se efectuează după lizarea eritrocitelor în 100 de pătrate mari dintr-o grilă de numărare și recalculată la 1 litru de sânge, pe baza volumului de pătrate și a diluției sângelui. Numărarea leucocitelor trebuie efectuată în 2-4 ore după recoltarea sângelui.
- Dacă există celule roșii nucleate în sângele periferic, acestea nu sunt lizate și sunt numărate împreună cu leucocitele. În acest caz, pentru a determina numărul real de leucocite, numărul de celule roșii este scăzut din numărul total de celule numărate.
- De exemplu: Numărul total de leucocite atunci când sunt numărate în cameră (sau pe analizor) este de 45x109/l. La calcularea formulei leucocitelor, s-a constatat că la 100 de leucocite există 50 de eritroblaste (normoblaste).
Calculăm numărul real de leucocite din sânge:
150 de celule- 45 x 109/l
100 celule (leucocite) - X
X =100*45*10/l /150 = 30*10/l
Astfel, adevăratul număr de leucocite din sânge este 30 x109/l.
Principalele surse de eroare la numărarea leucocitelor în cameră:
Raport incorect dintre volumele de sânge și acid acetic prelevate într-o eprubetă.
Soluție de acid acetic preparată incorect (la o concentrație mai mare de 5%, unele leucocite pot fi lizate, ceea ce va duce la o subestimare a rezultatului).
Expunerea prelungită a probei la temperaturi peste 28°C, ceea ce poate accelera liza leucocitelor din probă și poate duce la o subestimare a rezultatului.
Umplerea incorectă a camerei lui Goryaev. Ca și în cazul numărării globulelor roșii, camera trebuie lăsată timp de 1 minut pentru a permite celulelor să se așeze.
Camera lui Goryaev nu a fost spălată suficient de bine după determinarea anterioară. Leucocitele rămase în cameră pot umfla rezultatele testului.
Metode de numărare a trombocitelor
În camera de numărare
Frotiuri de sânge
Analizor hematologic
Fiecare grup de metode are avantaje și dezavantaje.
Numărarea trombocitelor în cameră este destul de precisă și nu necesită numărul de globule roșii pentru calcul. Pe de altă parte, această metodă necesită mai multă muncă, deoarece trombocitele în forma lor nativă sunt reprezentate de elemente mici și slab contrastate. Dezavantajul acestei metode este numărarea trombocitelor în următoarele ore după recoltarea sângelui.
Determinarea numărului de trombocite din frotiurile de sânge este semnificativ inferioară ca precizie față de metoda camerei sau contoare automate. Erorile de numărare în frotiurile de sânge se pot datora calității proaste a frotiului și distribuției neuniforme asociate a trombocitelor și determinării inexacte a numărului de celule roșii din sânge. Un inconvenient semnificativ al metodei este necesitatea de a număra simultan trombocitele și globulele roșii din sânge. Avantajul său este capacitatea de a studia trombocitele în orice moment, indiferent de momentul recoltării sângelui.
Metoda de determinare a trombocitelor cu ajutorul unui analizor hematologic vă permite să determinați cu exactitate numărul de trombocite, volumul mediu și distribuția volumului acestora.
Încărcare...